ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه خصوصیات مورفولوژیکی، محتوا و اجزای اسانس آویشن باغی (Thymus vulgaris) و دو توده بومی آویشن خراسانی (Thymus transcaspicus) در شرایط آب و هوایی مشهد
آویشن یکی از مهمترین گیاهان دارویی ایران و جهان است که به دلیل داشتن دو ترکیب تیمول و کارواکرول دارای خواص دارویی متنوعی میباشد. هدف از انجام این آزمایش بررسی خصوصیات میکروسکوپی و مورفولوژیکی آویشن باغی (Thymus vulgaris) در مقایسه با دو توده آویشن خراسانی (Thymus transcaspicus) در شرایط کشت شده آب و هوایی مشهد میباشد. بدین منظور آزمایشی به صورت طرح بلوک کاملً تصادفی با 3 تیمار و 4 تکرار و در هر تکرار 9 بوته انجام شد. تیمارها شامل آویشن باغی و دو توده آویشن خراسانی (A و B) بود. نتایج نشان داد که تنوع در خور توجهی از نظر صفات مهم اصلاحی گیاهان دارویی بین تیمارها وجود دارد. با توجه به نتایج بدست آمده از لحاظ خصوصیات مورفولوژیکی بزرگترین طول و عرض برگ، تعداد گل و طول گل، فاصله میانگره و طول گلآذین در توده Aآویشن خراسانی مشاهده شد و بیشترین عملکرد تر و خشک، ارتفاع گیاه، بزرگترین قطر تاج پوشش و درصد اسانس مربوط به بوتههای آویشن باغی بود. نتایج آنالیز GC-MS نشان داد که اسانس آویشن باغی دارای 31 ترکیب و اسانس آویشنهای خراسانی دارای 27 ترکیب بودند. با توجه به تصاویر میکروسکوپ الکترونی روبشی در آویشنهای مورد مطالعه دو نوع کرک غدهای و پوششی تشخیص داده شد که کرک غدهای از نوع سپری بدون پایه بود. در آویشن باغی میانگین اندازه کرکهای سپری و کرکهای پوششی به ترتیب 11/73 و 33/57 میکرومتر بود که در مقایسه با آویشنهای خراسانی، تراکم کرکهای پوششی و سپری بیشتر بود. در مجموع نتایج بدست آمده حکایت از وجود پتانسیل ژنتیکی مناسبی از لحاظ کلیه صفات در آویشنهای خراسانی و باغی داشت که میتوان با انتقال صفات از آویشن باغی در برنامههای اصلاحی به عنوان پایه به آویشن خراسانی حداکثر استفاده را به عمل آورد و میتوان از این گونه بومی ایران به عنوان جایگزین مناسبی برای گونه اروپایی آویشن باغی جهت مقاصد مختلف، بالاخص کاربردهای دارویی استفاده کرد.
https://jhs.um.ac.ir/article_37054_22624513ad612c53fac710fc321f6af3.pdf
2020-02-20
567
576
10.22067/jhorts4.v33i4.62795
هرمافرودیت
آویشن باغی
اسانس
سمانه
محمدی
s.mohammadi35@yahoo.com
1
دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
مجید
عزیزی
azizi@ferdowsi.um.ac.ir
2
دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
LEAD_AUTHOR
جمیل
واعظی
vaezi@um.ac.ir
3
دانشکده علوم، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
1. Adams R.P. 2001. Identification of essential oil components by Gas Chromatography and Mass Spectrometry. Allured, USA, 750p.
1
2. Aflakian S., Zeinali H., Madah Arefi H., Enteshari Sh., and Kaveh Sh. 2012. Study of eleven ecotype yield daenensis thyme (Thymus daenensis Celak). Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants 28(2): 187-197. (In Persian with English Abstract)
2
3. Ascensao L., and Marques M. S. 1995. Annals of Botany. 75, 619p.
3
4. Azizi M., Ghazian Tafreshi G., and Mirmostafaee S. 2015. Breeding of medicinal plants. Nokhost Press. 132p. (In Persian)
4
5. Bezic N., Dunkic V., and Radonic A. J. 2001. Flar. Frag. 16, 157p.
5
6. Davazdah Emami S., and Majnonolhosseini N. 2009. Plant and produce of medicinal plants and spice. Tehran of University. 300p. (In Persian with English Abstract)
6
7. Horwath A.B., Grayer R.J., Keith-Lucas D.M., and Simmonds M.S. 2008. Chemical characterization of wild populations of Thymus from different climatic regions in south-east Spain. Biochemical Systematics and Ecology 36(2): 117-133.
7
8. Jamzad Z. 2010. Thymus and Satureja of Iran. Press of Forests and Meadows of Country. Tehran. P. 171. (In Persian)
8
9. LÓPEZ‐PUJOL J.O.R.D.I., Bosch M., Simon J., and Blanche C. 2004. Allozyme diversity in the tetraploid endemic Thymus loscosii (Lamiaceae). Annals of Botany 93(3): 323-332.
9
10. Majd A., Nejad Satari T., Khavari Nejad R., and Dousti B. 2010. Study of qualitative and quantitative changes of volatile compounds Savory Khuzestan (Satureja khuzistanica Jamzad) during plant development and antimicrobial properties of essential oils in terms of In vitro. Journal of Islamic Azad University. 18: 51-60. (In Persian with English Abstract)
10
11. Ping J., Hanzhu L., Ting G., and Hua X. 2013. Glandular Trichomes and Essential Oil of Thymus quinquecostatus. The Scientific World Journal 1-9.
11
12. Stevanovic D., Sostaric I., Marin P.D., Stojanovic D., and Ristic M. 2008. Population variability in Thymus glabrescens Willd. From Serbia: morphology, anatomy and essential oil composition. Archives of Biological Science Belgrade. 60(3): 475-483.
12
13. Vejdani H. 2002. Investigation produce and export of Iranian medicinal plant. National congress on medicinal plants of Iran. Karaj. Institute of research Forests and Meadows of Country. (In Persian with English Abstract)
13
14. Venkatachalam K. V., Kjonass R., and Croteao R. 1984. Plant Physiology. 76, 148p.
14
15. Vernet P., Gouyon R. H., and Valdeyron G. 1986. Genetic control of the oil content in Thymus vulgaris L: a case of polymorphism in a biosynthetic chain. Genetica, 69(3), 227-231.
15
16. Yavari A., Nazari V., and Hassani M. 2010. Study of some ecological characteristics, morphological and essential oil content of thyme in Azarbijan. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants 2: 227-239. (In Persian with English Abstract)
16
ORIGINAL_ARTICLE
پرآوری شاخساره درونشیشهای گلابی رقم شکری تحت تاثیر عناصر غذایی محیطکشت در فضای نرم افزار Design Expert
بمنظور بهبود رشد شاخههای باززایی شده گلابی رقم شکری آزمایشی در فضای نرم افزار Design Expert در قالب 20 نقطه شامل مقادیر تصادفی از سه فاکتور عناصر غذایی (NH4NO3، آهن و عناصر میکرو) اجرا شد. پاسخ ریزنمونهها از نظر تعداد شاخه پرآوری شده، طول شاخه پرآوری شده، تعداد برگ، مقدار کلروفیل a برگ، کارتنوئید برگ و قدرت رشدی بعد از دو ماه ثبت گردید. فاکتورهای مورد بررسی در قالب مدلهای حاصل از تجزیه آماری (مدلهای خطی، چندجملهای ساده و چند جملهای درجه دوم) بر پاسخهای مورد ارزیابی بطور معنیداری موثر بودند. افزایش آهن تا یک و نیم برابر و کاهش NH4NO3 به نصف غلظت آنها در محیط کشت MS باعث افزایش تعداد شاخه پرآوریشده (43/4 برابر) گردید. NH4NO3، آهن × عناصر میکرو رابطهی خطی منفی با طول شاخه نشان دادند درحالیکه تعداد برگ بطور منفی متاثر از عناصر میکرو بود. با افزایش NH4NO3 از طول شاخه پرآوری شده کاسته شد و از طرف دیگر مقادیر 5/0× و1× محیط کشت MS به ترتیب برای آهن و میکرو باعث افزایش 5/1 برابری در طول شاخه شد. شاخههای رشد یافته در محیط کشت حاوی 1× مقادیر میکرو در محیط کشت پایه MS به میزان 5/1برابر برگ بیشتری نسبت به مقادیر 2× تولید کردند. محتوی کلروفیل a و کارتنوئید برگ در قالب مدل خطی تحت تاثیر مقادیر آهن (مثبت) و NH4NO3 (منفی) قرار گرفتند. افزایش آهن تا 5/1× برابر و کاهش NH4NO3 تا 5/0× برابر محیط کشت پایه MS باعث افزایش 2 برابری در میزان کلروفیل a و کارتنوئید شد. NH4NO3 و میکرو در قالب رابطه خطی منفی رشد رویشی را تحت تاثیر قرار دادند بطوریکه نصف مقادیر NH4NO3 با افزایش تعداد شاخه پرآوری شده و طول شاخه موجب افزایش قدرت رشدی شاخه تا 5/2 برابر شاهد گردید و کاهش مقادیر میکرو از طریق افزایش طول شاخه بر قدرت رشدی تاثیر مثبت داشت. محیط کشت بهینه شده برای گلابی شکری با استفاده از نرم افزار Design Expert محیط کشت MS تغییر یافته به ترتیب حاوی 9/0×، 1× و 5/0× مقادیر آهن، میکرو و NH4NO3 بود.
https://jhs.um.ac.ir/article_37059_4c209982a7a26976f13fd193208f2b08.pdf
2020-02-20
577
591
10.22067/jhorts4.v33i4.70420
ازدیاد درونشیشهای
عناصر غذایی
Pyrus communis
Surface response design
ساجده
کریم پور
s.karimpour@yahoo.com
1
دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
غلامحسین
داوری نژاد
davarynej@um.ac.ir
2
دانشگاه فردوسی مشهد
LEAD_AUTHOR
محمد
زکی عقل
zakiaghl@ferdowsi.um.ac.ir
3
دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
محمدرضا
صفرنژاد
mrsafarnejad@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور
AUTHOR
1. Al Maarri K., Duron M., Arnaud Y., and Miginiaaac E. 1986. Etude comparative de l’aptitude a la micropropagation, par culture de meristemes in vitro, du poiriers juveniles issus de semis de ‘Passe Crassane’. C.R. Acad. Agric. Fr., 72:413-421.
1
2. Bell R.L., and Reed B.M. 2002. In vitro tissue culture of pear: advances in techniques for micropropagation and germplasm preservation. Acta Horticulturae, 596:412–418.
2
3. Bell R.L., Srinivasan C., and Lomberk D. 2009. Effect of nutrient media on axillary shoot proliferation and preconditioning for adventitious shoot regeneration of pears. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant., 45:708–714
3
4. Bennett W.F.1993. Nutrient deficiencies and toxicities in crop plants. APS Press, Minneapolis, MN, 202 pp.
4
5. Chenard, C.H., Kopsell, D.A., and Kopsell, D.E. 2005. Nitrogen Concentration Affects Nutrient and Carotenoid Accumulation in Parsley. Journal of Plant Nutrition, 28(2): 285-297.
5
6. Chevreau E., and Skirvin R.M. 1992. Pear. In: Hammerschlag F.A., Litz R.E. (ed.): Biotechnology of perennial fruit crops. Biotechnology in Agriculture. CAB International, Wallingford, 8: 263–276.
6
7. Dere S., Gunes T., and Sivaci R.1998. Spectrophotometric determination of chlorophyll a, b and total carotenoid content of some algae species using different solvent. Botany, 22 (1): 13-17.
7
8. Design-Expert. 2010. Stat-Ease, Inc., Minneapolis.
8
9. Domonkos M., Kis Z., and Gombos B. 2013. Ughy Carotenoids, versatile components of oxygenic photosynthesis. Prog. Lipid Res., 52: 539-561.
9
10. Engelsberger W.R., and Schulze W.X. 2012. Nitrate and ammonium lead to distinct global dynamic phosphorylation patterns when resupplied to nitrogen starved Arabidopsis seedlings. Plant Journal, 69: 978–995.
10
11. Evens T.J., and Niedz R.P. 2008. ARS-Media: Ion Solution Calculator, U.S. Horticultural Research Laboratory, Ft. Pierce, FL 34945 USA
11
12. Gago J., Martinez-Nú´nez L., Landin M., and Gallego P.P. 2010.Artificial neural networks as an alternative to the traditional statistical methodology in plant research. Journal of Plant Physiology, 167: 23–27.
12
13. Gallego P.P., Gago J., and Landin M. 2011. Artificial neural networks Technology to model and predict plant biology process. p. 197–216. In K. Suzuki, Artificial Neural Networks-Methodological and Biomedical Applications, (Croatia: Intech Open Access Publisher).
13
14. Greenway M.B, Phillips I.C., Lloyd M.N., Hubstenberger J.F., and Phillips G.C. 2012. A nutrient medium for diverse applications and tissue growth of plant species in vitro. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 48:403–410
14
15. Hermans C., Vuylsteke M., Coppens F., Cristescu S.M., Harren F.J., Inze D., and Verbruggen N. 2010. Systems analysis of the responses to long-term magnesium deficiency and restoration in Arabidopsis thaliana. New Phytologist, 187:132–144.
15
16. Hashimoto H., Uragami C., and Cogdell R.J. 2016. Carotenoids and photosynthesis Subcell. Biochem, 79: 111-139.
16
17. Hsu W., and Miller G.W. 1969. Copro-porphyrinogenase in tobacco (Nicotiana tabacum L.). Biochem, 1 (117): 215-220.
17
18. Ivanova M., and Van Staden J. 2009. Nitrogen source, concentration, and NH4+:NO3− ratio influence shoot regeneration and hyperhydricity in tissue cultured Aloepolyphylla. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 99: 167–174.
18
19. Karimpour S., Davarynejad G.H., Bagheri A., and Tehranifar A. 2013. In Vitro Establishment and Clonal Propagation of Sebri Pear Cultivar. Journal of Agricultural Science and Technology, 15: 1209-1217.
19
20. Li B.H., Li Q, Xiong L.M., Kronzucker H.J., Kramer U., and Shi W.M. 2012. Arabidopsis plastid AMOS1/EGY1 Integrates abscisic acid signaling to regulate global gene expression response to ammonium stress. Plant Physiol, 160: 2040-51.
20
21. Lloyd G., and McCown B. 1981. Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot tip culture. The International Plant Propagators' Societ, 30:421-427.
21
22. Miller G.W., Pushnik J.C. and Welkie G. 1984. Iron chlorosis a worldwide problem, the relation of chlorophyll biosynthesis to iron. 1. Plant Nutrition, 7: 1-22.
22
23. Murashige T., and Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15:473–497
23
24. Nakajima I., Ito A., Moriya S., Saito T., Moriguchi T., and Yamamoto T. 2012. Adventitious shoot regeneration in cotyledons from Japanese pear and related species. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 48:396–402
24
25. Nedelcheva S. 1986. Effect of inorganic components of the nutrient medium on in vitro propagation of pears. Genetics Selection Evolution, 19:404-406.
25
26. Nezami Alanagh E., Garoosi GH-A., Hadad B., Maleki S., Landin M., and Gallego P.P. 2014. Design of tissue culture media for efficient Prunus rootstock micropropagation using artificial intelligence models. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 117:349 -359.
26
27. Niedz R.P., and Evens T.J. 2006. A solution to the problem of ion confounding in experimental biology. Nature Methods, 3:417.
27
28. Niedz R.P., and Evens T.J. 2007. Regulating plant tissue growth by mineral nutrition. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 43:370–381.
28
29. Niedz R.P., Hyndman S.E., and Evens T.J. 2007. Using a Gestalt to measure the quality of in vitro responses. Scientia Horticulturae, 112:349–359.
29
30. Niedz R.P., Hyndman S.E., Evens T.J., and Weathersbee A.A. 2014. Mineral nutrition and in vitro growth of Gerbera hybrida (Asteraceae). In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 50: 458.
30
31. Pandey N. 2018. Role of Plant Nutrients in Plant Growth and Physiology (Chapter 2). M. Hasanuzzaman et al. (eds.), Plant Nutrients and Abiotic Stress Tolerance, 51-93.
31
32. Preece J. 1995. Can nutrient salts partially substitute for plant growth regulators?. Plant Tissue Culture and Biotechnology, 1:26–37.
32
33. Quoirin M., and Lepoivre P. 1977. Etude de milieux adaptes aux cultures in vitro de Prunus. Acta Horticulturae, 78:437-442.
33
34. Ramage C.M, and Williams R.R. 2002. Mineral nutrition and plant morphogenesis. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 38:116–124.
34
35. Reed B.M, DeNoma J.S., Wada S., and Postman J.D. 2012. Micropropagation of pear (Pyrus sp). Chapter 1. p. 3–18.In: Lambardi M., Ozudogru E.A., Jain S.M. (eds) Protocols for micropropagation of selected economically-important horticultural plants. Humana, New York.
35
36. Reed B.M., Sarasan V., Kane M., Bunn E., and Pence V. 2011. Biodiversity conservation and conservation biotechnology tools. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant. 47:1–4
36
37. Reed B.M., Wada S., DeNoma J., and Niedz RP. 2013a. Improving in vitro mineral nutrition for diverse pear germplasm. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 49:343-355.
37
38. Reed B.M., Wada S., DeNoma J., and Niedz RP. 2013b. Mineral nutrition influences physiological responses of pear in vitro. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 49:699-709.
38
39. Sanchez-Zabala J., Gonz_alez-Murua C., and Marino D. 2015. Mild ammonium stress increases chlorophyll content in Arabidopsis thaliana. Plant Signaling & Behavior, 10 (3): 9915961-3.
39
40. Sathyanarayana B.N., and Blake J.1994. The effect of nitrogen sources and initial pH of the media with or without buffer on in vitro rooting of jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam). P. 77-82. In P. J. Lumsden, J.R. Nicholas and W.J. Davies. Physiology Growth and Development of Plants in Culture. Dordrecht: Kluwer.
40
41. Spiller S.C., Castelfranco A., and Castelfranco P. 1982. Effects of iron and oxygen on chlorophyll biosynthesis. I. In vivo observations of iron and oxygen - deficient plants. Plant Physiol, 69: 107-111.
41
42. Takatsuji H. 1999. Zinc finger proteins: the classical zinc finger emerges in contemporary plant science. Plant Mol Biol 39:1073–1078.
42
43. Tang H, Luo Y., and Liu C. 2008. Plant regeneration from in vitro leaves of four commercial Pyrus species. Plant, Soil and Environment, 54 (4): 140–148.
43
44. Thakur A., and Kanwar J.S. 2008. Micropropagation of ‘wild Pear’ Pyrus pyrifolia (Burm F.) Nakai.I. explant establishment and shoot multiplication. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 36 (1): 103-108.
44
45. Wada S., Niedz R.P., and Reed B.M. 2013. Determining nitrate and ammonium requirements for optimal in vitro response of diverse pear species. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 49:356–365.
45
46. Wada S., Maki Sh., Niedz R.P., and Reed B.M. 2015. Screening genetically diverse pear species for in vitro CaCl2, MgSO4 and KH2PO4 requirements. Acta Physiologiae Plantarum, 37: 63.
46
47. Wada S., Niedz R.P., DeNoma J., and Reed B.M. 2013. Mesos components (CaCl2, MgSO4, KH2PO4) are critical for improving pear micropropagation. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 49:356–365.
47
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر تنش ناگهانی دمای پایین ریشه و شاخساره بر بازیابی برخی صفات رویشی و فیزیولوژیکی گوجهفرنگی (Lycopersicon escuhentum var. Infinity) در حضور بور
به منظور مقایسه اثر تنش ناگهانی دمای پایین ریشه و قسمت هوایی بر بازیابی صفات رویشی و فیزیولوژیکی گوجهفرنگی پژوهشی در آزمایشی در شرایط محیطی کنترل شده در دانشکده کشاورزی دانشگاه صنعتی اصفهان انجام شد. این دو آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با 10 تکرار شامل دو تیمار غلظتهای مختلف عنصر بور (0 ، 5/0، 1 و 5/1 بر حسب پیپیام) و دو سطح دمایی بخشهای هوایی (10 درجه سانتیگراد دمای تنش سرمایی بخش هوایی و ریشه و 22 درجه سانتیگراد دمای بهینه و شاهد) انجام شد. نتایج نشان داد بیشترین میزان فتوسنتز، میزان وزن خشک ریشه و بخش هوایی از تیمار مصرف 5/0 پیپیام بور در حین تنش ناگهانی دمای پایین بر روی ریشه بود. بیشترین میزان آنتیاکسیدان، فنول، پرولین ساقه و نشت الکترولیت نیز از تیمار مصرف 5/1 پیپیام بور در حین تنش بر قسمت هوایی بدست آمد. به نظر میرسد تنش ناگهانی دمای پایین ریشه و قسمت هوایی میزان بازیابی صفات رویشی و فیزیولوژیکی گوجهفرنگی را کاهش میدهد اما زمانی که دمای پایین بر قسمت هوایی تحمیل شد گیاه متحمل خسارات بسیار بیشتری شد که این خسارات خود را در دوره بازیابی نشان داد. همچنین مصرف 5/0 پیپیام از عنصر بور در حین تنش سرمایی با ایجاد شرایط بهینه جهت رشد، باعث خنثیسازی نسبی اثرات تنش دمای پایین در ناحیه ریشه شده و گیاه را در وضعیت مطلوبی نگه داشت به نحوی که پس از دوره بازیابی، گیاه توانست خود را به شرایط قبل از تنش سرمایی نزدیک کند.
https://jhs.um.ac.ir/article_37066_134913a377442c3102c87bf0abe02791.pdf
2020-02-20
593
608
10.22067/jhorts4.v33i4.68996
پرولین ساقه
فتوسنتز
نشت الکترولیت
وزن خشک ریشه
وزن خشک ساقه
فهمیه
دژآباد
fahim.dezhabad1992@yahoo.com
1
دانشگاه صنعتی اصفهان
AUTHOR
مریم
حقیقی
mhaghighi@cc.iut.ac.ir
2
دانشگاه صنعتی اصفهان
LEAD_AUTHOR
1- Ahn S.J., Im Y.J., Chung G.C., Cho B.H., and Suh S.R. 1999. Physiological responses of grafted-cucumber leaves and rootstock roots affected by low root temperature. Plant Cell Reports, 19: 397-408.
1
2- Allen D.J., and Ort D.R. 2001. Impact of chilling temperature on photosynthesis in warm climate plants. Trends in Plant Science, 6: 36-42.
2
3- Ashraf M., and Foolad M.R. 2007. Roles of glycine betaine and proline in improving plant abiotic stress resistance. Environmental and Experimental Botany, 59: 206-216.
3
4- Azzarello E., Mugnai S., Pandolfi C., Masi E., Marone E., and Mancuso S. 2009. Comparing image (fractal analysis) and electrochemical (impedance spectroscopy and electrolyte leakage) techniques for the assessment of the freezing tolerance in olive, Trees 23:159-167.
4
5- Baba K., Itoh S., Hastings G., and Hoshina S. 1995. Photoinhibition of Photosystem I electron transfer activity in isolated Photosystem I preparations with different chlorophyll contents. Photosynthesis Research, 47: 121-130.
5
6- Bates L., Waldren R.P., and Teare I.D. 1973. Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant Soil, 39: 205-207.
6
7- Berry J.A., and Raison J.K. 1981. Response of macrophytes to temperature . Physiological Plant Ecology, 12:227-338.
7
8- Binzel M.L., Hasegawa P.M., Rhodes D., Handa S., Handa A.K., and Bressan R.A. 1987. Solute accumulation in tobacco cells adapted to NaCl. Plant Physiology, 84:1408-1415.
8
9- Blum B., and Ebercon A. 1981. Cell membrane stability as a measure of drought and heat tolerance in wheat. Journal of Crop Science, 21: 43- 47.
9
10- Bradford M.M. 1976. A rapid and sensitive method for quantitation of microgram of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry Quantities, 72: 248-254.
10
11- Cakmak I., and Römheld V. 1997. Boron deficiency-induced impairments of cellular functions in plants. Plant Soil, 193:71-83.
11
12- Camacho-Cristobal J.J., and Gonzalez-Fontes A. 2007. Boron deficiency decreases plasmalemma H+-ATPase expression and nitrate uptake, and promotes ammonium assimilation into asparagines in tobacco roots. Planta, 226:443-451.
12
13- Campos P.S., Quartin V., Ramalho J. C., and Nunes M.A. 2003. Electrolyte leakage and lipid degradation account for cold sensitivity in leaves of Coffea sp. Plants. Journal of Plant Physiology, 160: 283-292.
13
14- Chen Y., Zhang M., Chen T., Zhang Y., and An L. 2006. The relationship between seasonal changes in antioxidative system and freezing tolerance in the leaves of evergreen woody plants of Sabina. South Afrcan Journal of Botany, 72: 272-279.
14
15- Danon A., and Mayfield S. 1994. Light-regulated translation of chloroplast messenger RNAs through redox potential. Science, 266:1717–1719.
15
16- Deepah N., Kura C., singhb H., And Kapoor H.C. 2007. Antioxidant properties in sweet pepper (Capsicum annum L.) genoryps during maturation. Food Science Technology, 40: 121-124.
16
17- Eraslan F., Lnal A., Gunes A., and Alpaslan M. 2007. Boron toxicity alters nitrate reductase activity, proline accumulation, membrane permeability and mineral constituents of tomato and pepper plants. Journal of Plant Nutrition, 30(6):981-994.
17
18- Fox J., Del Pozo-Insfrica A.D., Hee Lee J., Sargent S.A., and Talcott S. T. 2005. Ripening induced chemical and antioxidant changes in bell pepper as affect harvest maturity and postharvest ethylene exposure. Horticultural Science, 40:732-736.
18
19- Gheybi M., and Malakooti J. 2004. A guide for wheat, nutrient deficiency and plant nutrition. Ministry of Agriculture Publishing.
19
20- Guertal E.A. 2004. Boron fertilization of bentagrass. Crop Science, 44: 204–208.
20
21- Guidong L., Cuncang J., and Yunhua W. 2011. Distribution of boron and its forms in young ‘‘Newhall’’ navel orange (Citrus sinensis Osb.) plants grafted on two rootstocks in response to deficient and excessive boron. Soil Science Plant Nutrition, 57: 93-104.
21
22- Haghighi M., Heidarian S., Teixeira J., and Silva da A. 2012. The effect of Titanium amendment in N-withholding nutrient solution on physiological and photosynthesis attributes and micro-nutrient uptake of tomato. Biological Trace Element Research, 150: 381-390.
22
23- Hasanfard A., Nezami A, and Nabati J. 2015. Importance of plant selection for cold tolerance. Fourth International Conference on Applied Research in Agricultural Science. (in Persian)
23
24- Hu Y., Zhu Z., Yang J. Ni X., and Zhu B. 2009. Grafting increase the salt tolerance of tomato by improvement of photosynthesis and enhancement of antioxidant enzymes activity Environmental and Experimental Botany, 66:270-278.
24
25- Irigoyen J.J., Emerrich D.W., and Sanchez-Diaz M. 1992. Water stress induced changes in concentrations of proline and total soluble sugars in nodulated alfalfa plant. Physiological Plant, 84: 55-60.
25
26- Joshi S.C., Chandra S., and Palni L.M.S. 2007. Differences in photosynthetic characteristics and accumulation of osmoprotectants in saplings of evergreen plants grown inside and outside a glasshouse during the winter season. Photosynthetica, 45(4): 594-600.
26
27- Koichi M., Shigemi T., Toshihiko M., and Kazuyoshi K. 2005. Recovery responses of photosynthesis, transpiration, and stomatal conductance in kidney bean following drought stress. Environment of Experiment Botany, 53:205-214.
27
28- Koocheki A., Zand A., Rezvani Moghaddam P., Mahdavi Damghani A., Jami AL-Ahmadi M., and Vesal S. 2005. Plant Ecophysiology. Ferdowsi University of Mashhad Publication. (In Persian)
28
29- Liu P. 2001. The research development of molybdenum and boron nutrition in soybean. China Agricultural Science Bulletin, 17: 41–44
29
30- Lone M.I., Kueh J.S.H., Wyn Jones R.G., and Bright S.W.J. 1987. Influence of proline and glycinebetaine on salt tolerance of cultured barley embryos. Journal of Experimental Botany, 38:479-490.
30
31- Lyons M.J., Graham D., and Raison J.K. 1979. Low temperature stress in crop plants: The role of the membrane. Academic press, New York.
31
32- Malakooti M., and Tehrani M.M. 1999. The role of micronutrients in improving performance and improving product quality. Tarbiat Modares University Press. (in Persian)
32
33- Marschner H. 1995. Mineral Nutrition of Higher Plants (2nd Edition). Academic Press institute, London.
33
34- Molla S., Villar-Salvador P., Garcia-Fayos P., and Rubira J.L. 2006. Physiological and transplanting performance of holm oak seedlings grown in nurseries with different winter conditions. Forest Ecology and Management, 237: 218-226.
34
35- Mordi talavat M.M., Kazemi Z., and Siaadat S.A. 2016. Canola physiological, growth and yield response to boron application affected by heat stress due to late planting dates. Behzeraee keshavarzi, 18(1): 55-67.
35
36- Nasef M.A., Badran N.M., and Abd El-Hamide A.F. 2006. Response of peanut to foliar spray with boron and/or rhizobium inoculation. Journal of Applied Sciences Research, 2(12): 1330-1337.
36
37- O’Neil M.A., Ishii T., Albersheim P., and Darvil A.G. 2004. Rhamnogalacturonan II: structure and function of a borate cross-linked cell wall pectic polysaccharide. Annual Review of Plant Biology, 55: 109-139.
37
38- Ort D.R. 2002. Chilling-induced limitations on photosynthesis in warm climate plants: contrasting mechanisms. Environmental Control in Biology, 40: 7-18.
38
39- Ouzounidou G., Ilias I., Kabataidid M., and Chatzimichail A. 2003. Comparative study of nutrient deficiencies on growth and photochemistry of tobacco. Journal of Plant Nutrition, 26: 1605-1616.
39
40- Quick P., Siegl G., Neuhaus E., and Feil R. 1989. Short term water stress leads to a stimulation of sucrose synthesis by activating sucrose phosphate synthase. Planta, 177: 535-546.
40
41- Rab A., and Saltveit M.E. 1996. Differential chilling sensitivity in cucumber seedling. Physiologia Plantarum, 96: 375-382.
41
42- Reid R.J., Hayes J.E., Post A., Stangoulis J.C.R., and Graham R.D. 2004. A critical analysis of the cause of boron toxicity in plants. Plant, Cell and Environment, 25:1405- 1414.
42
43- Ritchie S.W., Nyvgen H.I., and Halady A.S. 1990. Leaf water content and gas exchange parameters of two wheat genotypes differing in drought resistance. Crop Science, 30:105-111.
43
44- Romero P., Navarro J. M., Garcia F., and Ordaz P.B. 2004. Effects of regulated deficit irrigation during the pre-harvest period on gas exchange, leaf development and crop yield of mature almond trees. Tree Physiology, 24:303–312.
44
45- Saadatmand M., and Enteshari S. 2013. Effect of pre-treatment pre-treatment time with silicon on salinity tolerance in Iranian bovine herb (Echium amoenum Fisch & C.A. mey) Science and technology of greenhouse crops, 3(12):45-56.
45
46- Seppanen M.M. 2000. Characterize of freezing tolerance in Solanum commersonii with special reference of the relationship between and oxidative stress. Section of Crop Husbandry, 56: 4-44.
46
47- Sheligl H.Q. 1986. Die verwertung orgngischer souren durch chlorella lincht. Planta Journal, 47-51.
47
48- Shimono H., Hasegawa T., Fujimura S., and Iwama K. 2004. Responses of leaf photosynthesis and plant water status in rice to low water tempreture at different growth stage. Field Crop Research, 89: 71-83.
48
49- Sing R. P., Chidambara Murthy K. N., and Jayaprakash G.K. 2002. Studies on the antioxidant activity of pomegranate peel and seed extracts using in vitro models. Agricultural and Food Chemistry, 50: 81–86.
49
50- Sotiropoulos T.E., Therios I.N., Dimassi K.N., Bosabalidis A., and Kofidis G. 2002. Nutritional status, growth, CO2 assimilation, and leaf anatomical responses in two kiwifruit species under boron toxicity. Journal of Plant Nutrition, 25: 1249-1261.
50
51- Souza R. P., Machado Silva E.C., Lagoa J.A.B., and Silveria J.A.G. 2004. Photosynthetic gas exchange, chlorophyll fluorescence and some associated metabolic changes in cowpea (Vigna unguiculata) during water stress and recovery. Environmental and Experimental Botany, 51:45–56.
51
52- Taiz L., and Zeiger E. 2002. Plant Physiology Sunderland: (3ed). Sinauer Associates, Inctitute.
52
53- Tarigholeslami M., Kafi M., Nezami A., and Zarghami R. 2015. Effects of chilling stress on physiological and biochemical traits of three hybrid of Corn (Zea mays L.) in seedling stage. Journal of Plant Research, 29(3): 552-540.( in Persian with English abstract)
53
54- Tjus S.E., Møller B.L., Scheller H.V.1998. Photosystem I is an early target of photoinhibiton in barley illuminated at chilling temperatures. Plant Physiology, 116: 755-764.
54
55- Voetberg G.S., and Sharp R.E.1991. Growth of the maize primary root tip at low water potentials. III. Role of increased proline deposition in osmotic adjustment. Plant Physiology, 96:1125-1130.
55
56- Wyatt S.E., Rashotte A.M., Shipp M.J., Robertson D., and Muday G.K. 2002. Mutations in the gravity persistence signal loci in Arabidopsis disrupt the perception and/or signal transduction of gravitropic stimuli. Plant Physiology, 130(3):1426-1435.
56
57- Yu L., Haley S., Perret J., Harris M., andQian M.J. 2002. Free radical scavenging properties of wheat extracts. Agricultural and Food Chemistry, 50:1619–16.
57
58- Zhao D.Y., Shen L., Fan B., Liu K.L., Yu M.M., Zheng Y., Ding Y., and Sheng J.P. 2009. Physiological and genetic properties of tomato fruits from 2 cultivars differing in chilling tolerance at cold storage. Food Chemical, 74: 348–352.
58
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی ویژگیهای فیزیکی میوه، متابولیتهای ثانویه و شاخص قهوهای شدن ژنوتیپ سیب توسرخ بکران و برخی ارقام سیب بهاره
به منظور مقایسه کیفیت سیب توسرخ بکران و برخی سیبهای بهاره ایران، میوههای ژنوتیپ سیب توسرخ بکران از روستای بکران در شهرستان شاهرود و چند رقم سیب بهاره در مرحله رسیدن میوه از ایستگاه تحقیقاتی گلمکان شهرستان مشهد تهیه شدند. ویژگیهای فیزیکی میوه شامل وزن تر، سفتی، وزن حجمی و ویژگیهای شیمیایی شامل اسیدیته، اسید کل، مواد جامد محلول، شاخص طعم، میزان آنتوسیانین، محتوای فنل کل، فلاونوئید کل، قدرت ضد اکسایشی و همچنین شاخص قهوهای شدن آنزیمی بافت میوه در ارقام انتخابی اندازهگیری شد. بیشترین مقدار قهوهای شدن آنزیمی در سیب پهپن و کمترین مقدار در سیب توسرخ بکران مشاهده شد. نتایج تجزیه واریانس دادهها نشان داد که بیشترین مقدار مواد جامد محلول در ژنوتیپ سیب توسرخ بکران (25 درجه بریکس) و کمترین مقدار در رقم گلاب صحنه (4/11 درجه بریکس) بود. بیشترین مقدار شاخص طعم میوه (TA/TSS) در ارقام پهپن، گلاب صحنه، و گلاب کهنز و کمترین مقدار در ژنوتیپ سیب توسرخ بکران (38/8) مشاهده شد. کمترین مقدار اسیدیته (98/2) در ژنوتیپ توسرخ بکران و بیشترین مقدار (61/4) در رقم گلاب کهنز مشاهده شدند. بیشترین مقدار آنتوسیانین در سیب توسرخ بکران (50/88) و کمترین مقدار در رقم گلاب صحنه (44/8) یافت شد. نتایج تجزیه واریانس دادهها نشان داد که بیشترین قدرت ضد اکسایشی مربوط به سیب توسرخ بکران (73/93 درصد) بود. سیب توسرخ بکران با دارا بودن بیشترین مقدار مواد جامد محلول، بیشترین مقدار آنتوسیانین و فلاونوئید و بیشترین قدرت ضداکسایشی و دارا بودن طعمی مطلوب و ظاهری متمایز میتواند به عنوان یک میوه کاملاً بومی با مصارف تازهخوری و جهت تولید فراوردههای مختلف مورد توجه قرار گیرد.
https://jhs.um.ac.ir/article_37074_397235a8fd4cd8e6cd559b435df6556b.pdf
2020-02-20
609
622
10.22067/jhorts4.v33i4.72902
بکران
سیب توسرخ
قدرت ضد اکسایشی
ویژگیهای فیزیکی و شیمیایی
بهرام
عابدی
abedy@um.ac.ir
1
دانشگاه فردوسی مشهد
LEAD_AUTHOR
طاهره
پروانه
par1330@gmail.com
2
دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
الهام
اردکانی
e.ardakani@yahoo.com
3
دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
1. Amiot M.J., Tacchini M., Aubert S., and Nicholas S. 1992. Phenolic composition and browning susceptibility of various apple cultivars at maturity. Journal of Food Science, 57: 958-962.
1
2. Anonymous 2. 2006. Hort research- newsroom- New apple packs health pnch. http://www. Hortresearch .co. nz/ index/ news/467.
2
3. Biedrzycka E., and Amarowicz E. 2008. Diet and health: apple polyphenols asantioxidants. Food Reviews International, 24: 235-251.
3
4. Brand-Williams W., Cuvelier M.E., and Berset C. 1995. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. Food Science Technology, 28: 25-30.
4
5. Cheynier V. 2005. Polyphenols in food are more complex than often thought. The American Journal of Clinical Nutrition, 81: 223S-229S.
5
6. Clarisse D. 2006. Hort research develops antioxidant-rich red-fleshed apple. http://www. Foodna vigator-usa.com
6
7. Coseteng M.Y., and Lee C.Y. 1987. Changes in apple polyphenoloxidase and polyphenol concentrations in relation to degree of browning. Journal of Food Science, 52: 985-989.
7
8. DeEll J., Toivonen P. M. A., Khanizadeh S., and Hampson C. 2009. Browning potential of new apple varieties. Acta Hort, 814: 529-532.
8
9. Defli J.R., Khanizadeh Sh., Saad F., and Ferree D.C. 2001. Factors affecting fruit firmness-A Review Journal of American Pomology Society, 55(1):8-27.
9
10. Dzhangaliev A.D., Salova T.N., and Turekhanova P.M. 2003. The wild fruits and nut plants of Kazakhstan. Horticultural Reviews, 29: 305-371.
10
11. Fallahi E., Simon B.R., Fellman J.K., Longstroth M.A., and Colt W.M. 1994.Tree growth and productivity and post harvest quality in various starins of Delicious apple. Journal of American Society for Horticultural Science, 119 (3):389-395.
11
12. Fan X., Kimberly J.B., Sokoral I., Ccheng-Hsing L., Ching-Hsing C., Peter C., and Zhang H.Q. 2005. Antibrowning and antimicrobial properties of sodium acid sulfate in apple slice. Journal of Food Science, 74: 485-492.
12
13. Faramarzi S., Yadollahi A., and Soltani B.M. 2014. Preliminary evaluation of genetic diversity among Iranian red fleshed apples using microsatellite marker. Agricultural Science and Technology, 16: 373-384.
13
14. Geisenheim H.P., Braun P., and Keicher R. 2009. Red apple Juice: Breeding, Drink- and Growing technology for the development of a new, innovative product. Bulletin USAM Horticulture,66(1)
14
15. Ghorbani E., Bakhshi D. 2011. Evaluation of Content of Chlorogenic Acid, Flavonoids and Antioxidant Potential of 13 Native and Foreign Apple Cultivars. Plant Production Technology, 11(2): 53-62.
15
16. Goulao L.F., & Oliveira C. M. 2008. Cell wall modifications during fruit ripening: when a fruit is not the fruit. Trends Food Science & Technology, 19, 4-25.
16
17. Hasani Gh., Rezaee R., Peirasteh Y., and Henareh M. 2014. Evaluation of some spur-type and standard apple cultivars in the northwestern region of Iran. International Journal of AgriScience, 4(6):301-306.
17
18. Iglesias I., Salvia J., Torguet L., Cabús C. 2002. Orchard cooling with overtree microsprinkler irrigation to improve fruit color and quality of ‘Topred Delicious’ apples. Scientia Horticulturae, 93: 39–51.
18
19. Joseph J.A., Shukitt-Hale B., Denisova N.A., Bielinski D., Martin A., McEwen J.J., and Bickford P.C. 1999. Reversals of age-related declines in neuronal signal transduction, cognitive, and motor behavioral deficits with blueberry, spinach, or strawberry dietary supplementation. Journal of Neuroscience, 19: 8114-8121.
19
20. Khanizadeh Sh., Tsao R., Rekika D., Yang R., Charles M.T., and Rupasinghe H.P.V. 2008. Polyphenol composition and total antioxidant capacity of selected apple genotypes for processing. Journal of Food Composition and Analysis, 21: 396-401.
20
21. Kliebenstein D. J. 2004. Secondary metabolites and plant/environment interactions: a view through Arabidopsis thaliana tinged glasses. Plant Cell and Environment, 27: 675-684.
21
22. Kuczyski A. P. 1995. The effect of cultivar on apple slice whiteness and enzymatic browning. Zemedelska Technika, 41: 51-54.
22
23. Lata B., Przeradzka M., and Bi"kowska M. 2005. Great differences in antioxidant properties exist between 56 apple cultivars and vegetation seasons. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 53: 8970-8978.
23
24. Lata B., Trampczynska A., and Pazesna J. 2009. Cultivar variation in apple peel and whole fruit phenolic composition. Scientia Horticulturae, 121: 176-181.
24
25. Le Bourvellec C.L., Le Quere J.M., Sanoner P., Drilleau J.F., and Guyot S. 2004. Inhibition of apple polyphenol oxidase activity by procyanidins and polyphenol oxidation products. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 52: 122-130.
25
26. Lee C.Y., and Smith N. L. 2000. Apples: an important source of antioxidants in the American diet. New York Fruit Quarterly, 8(2): 8-10.
26
27. Lee C.Y., and Smith N. L. 1995. Minimal processing of New York apples. New York’s Food and Life Sciences Bulletin, 145: 1-11.
27
28. Li X.J., Hou J.H., Zhang G.L., Liu R.S., Yang Y.G., Hu Y.X., and Lin J.X. 2004. Comparison of anthocyanin accumulation and morpho-anatomical feature in apple skin during color formation at tow habitats. Scientia Horticulturae, 99: 41-53.
28
29. Liu R. H., Eberhardt M. V., and Lee C. Y. 2001. Antioxidant and antiproliferative activities of selected New York apple cultivars. New York Fruit Quarterly, 9(2): 9-11.
29
30. Lozano J. E., Drudis-Biscarri R., and Ibarz-Ribas A. 1994. Enzymatic browning in apple pulps. Journal of Food Science, 59(3): 564-567.
30
31. Markowski J., and P"ocharski W. 2006. Determination of phenolic compounds in apples and processed apple products. Journal of Fruit and Ornamental Plant Research, 14: 133-142.
31
32. Matsumoto H., Nakamura Y., Tachibanaki S., Kawamura S., and Hirayama M. 2003. Stimulatory effect of cyanidin 3-glycosides on the regeneration of rhodopsin. J. Agric. Food Chem, 51: 3560-3563.
32
33. Mazza G., and Velioglu Y.S. 1992. Anthocyanin and other phenolic compounds infruits of red-flesh apples. Food Chem, 43: 113-117
33
34. Merwin I. A., Valois S., and Padilla-Zakour O. I. 2008. Cider apples and cidermaking techniques in Europe and North America. Horticultural Reviews. J. Janick, John Wiley & Sons, Inc., 34: 365-414.
34
35. Milani J., and Hamedi M. 2005. Susceptibility of five apple cultivars to enzymatic browning. Proceedings of the 5th International Postharvest Symposium, 682: 2221-2226.
35
36. Murata M., Tsurutani M., Tomita M., Homma S., and Kaneko K. 1995. Relationship between apple ripening and browning: changes in polyphenol content and polyphenol oxidase. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 43: 1115-1121.
36
37. Nicolas J.J., Richard‐Forget F. C., Goupy P. M., Amiot M.J., & Aubert S. Y. 1994. Enzymatic browning reactions in apple and apple products. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 34(2): 109-157.
37
38. Peterson F. 2008. "Company Website." Retrieved 4/27/09, 2009, fromhttp://petersonfarmsinc.com/.
38
39. Petkovsek M. M., Stampar F., and Veberic R. 2007. Parameters of inner quality of the apple scab resistant and susceptible apple cultivars (Malus domestica Borkh.). Scientia Horticulturae, 114: 37-44.
39
40. Rafiee M., Naseri L., Bakhshi D., Alizadeh A. 2012. Phenolic compounds and antioxidant activity of some Iranian and commercial apple varieties in West Azarbaijan province. Journal of Crops Improvement, 14(2): 43-55.
40
41. Renaud, S., and M.de Lorgeril. 1992. Wine, alcohol, platelets, and the French paradox for coronary heart disease. Lancet 339, 1523-1526.
41
42. Rezaee R. 2009. Locating of suitable organic sites for organic apple production in Urmia. Final report. West Azerbaijan Agriculture Research Center, Urmia, Iran.145p. (in Persian with English absract).
42
43. Sapers G. M., and Douglas F. W. 1987. Measurement of enzymatic browning at cut surfaces and in juice of raw apple and pear fruits. Journal of Food Science 52:1258-1262.
43
44. Smith M.A.L., Marley K.A., Seigler D., Singletary K., and Meline W.B. 2000. Bioactiveproperties of wild blueberry fruits. J. Food Sci, 65, 352-356.
44
45. Song Y., Yao Y. X., Zhai H., Du Y. P., Chen F., and Wei S. W. 2007. Polyphenolic compound and the degree of browning in processing apple varieties. Agricultural Sciences in China, 6(5): 607-612.
45
46. Sun J., Chu Y.F., Wu X., and Liu R.H. 2002. Antioxidant and antiproliferative activities of common fruits. Agricultural and Food Chemistry, 50: 7449-7454.
46
47. Tattini M., Remorini D., Pinelli P., Agati G., Sarasini E., Traversi M. L., and Massai R. 2006. Morpho-anatomical, physiological and biochemical adjustment in response rot ozone salinity stress and high solar radiation in two Mediteranean evergreen shrubs, Myrtus communis and Pistacia lentiscus. New phytologist, 170: 779-794.
47
48. Valentines M. C., Vilaplana R., Torres R., Usall J., and Larrigaudière C. 2005. Specific roles of enzymatic browning and lignification in apple disease resistance. Postharvest Biology and Technology, 36: 227-234.
48
49. Velioglu Y. S., Mazza G., Gao L., & Oomah B.D. 1998. Antioxidant activity and total phenolics in selected fruits, vegetables and grain products. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 46: 4113–4117.
49
50. Vinson J.A., Su X., Zubik L., Bose P. 2001. Phenol antioxidant quantity and quality in foods: fruits. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 49(11): 5315-21.
50
51. Volz R.K., McGhie T.K. 2011. Genetic variability in apple fruit polyphenol composition in Malus x domestica and Malus sieversii germplasm grown in New Zealand. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 59: 11509–11521.
51
52. Vrhovsek U., Rigo A., Tonon D., and Mattivi F. 2004. Quantitation of polyphenols in different apple varieties. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 52: 6532-6538.
52
53. Wang K.L., Micheletti D., Palmer J., Volz R., Lozano L., Espley R., Hellens R.P., Chagnè D., Rowan D.D., Troggio M., et al. (2011). High temperature reduces apple fruit color via modulation of theanthocyanin regulatory complex. Plant Cell Environ, 34: 1176–1190.
53
54. Wrolstad R.E. 1976. Color and pigment analyses in fruit products. Station bulletin 624. Corvallis, OR: Agricultural Experiment Station Oregon State University.
54
55. Yoo K. M., Lee C. H., Lee H., Moon B., and Lee C. Y. 2008. Relative antioxidant and cytoprotective activities of common herbs. Food Chemistry, 106: 929-936.
55
56. Zhishen J., Mengcheng T., and Jianming W. 1999. The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chemistry, 64: 555-559.
56
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات آنزیمهای آنتی اکسیدانی و پرولین طی رکود جوانه گل در چند رقم گیلاس و آلبالو
این تحقیق به منظور بررسی تغییرات آنزیمهای آنتی اکسیدانی و پرولین در طی رکود جوانه گل گیلاس ارقام زودرس، سیاه شبستر، زرد مشهد و یک ژنوتیپ محلی از آلبالو در آزمایشگاه بیولوژی گلدهی و فیزیولوژی رشد و نمو گروه علوم باغبانی دانشکده کشاورزی دانشگاه تبریز در سال زراعی 95-1394 انجام شد. نمونهبرداری از جوانههای درختان موجود در ایستگاه تحقیقاتی خلعت پوشان بصورت ماهانه انجام پذیرفت. وضعیت جوانهها از نظر تغییرات آنزیمهای آنتیاکسیدانی (کاتالاز، پراکسیداز و سوپراکساید دیسموتاز) در هر مرحله نمونهبرداری مورد بررسی قرار گرفت. سرماهای تجمعی در هر یک از این تاریخهای نمونهبرداری بر طبق مدل یوتا محاسبه گردید. همچنین تغییرات وزن تر جوانهها در طول دوره رکود بصورت هفتگی ارزیابی و در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با 5 تکرار تجزیه شد. نتایج نشان داد از نظر میزان فعالیت آنزیمهای کاتالاز، پراکسیداز و سوپراکسید دیسموتاز در طی رکود جوانه گل، اختلاف آماری در سطح احتمال 1 درصد دیده شد. در سه آنزیم مذکور آلبالو دارای بیشترین و گیلاس رقم سیاه شبستر کمترین میزان را دارا بود بطوری که بیشترین و کمترین میزان فعالیت آنزیمی به ترتیب در 360 و 820 واحد سرمایی میزان دیده شد. از نظر میزان پرولین بین مراحل مختلف نمونهبرداری و بین ارقام مورد مطالعه اختلاف آماری در سطح احتمال 1 درصد مشاهده شد. نتایج بیانگر آن است که رقم گیلاس زودرس دارای بیشترین میزان پرولین و آلبالو کمترین میزان این اسید آمینه را داشته است.
https://jhs.um.ac.ir/article_37082_98921139e18ddbf0ed127f2120735480.pdf
2020-02-20
623
637
10.22067/jhorts4.v33i4.74475
پراکسیداز، رکود
سوپراکسید دیسموتاز
کاتالاز
مدل یوتا
اکبر
انگوتی
akbarangooti9396@gmail.com
1
دانشگاه تبریز
LEAD_AUTHOR
جعفر
حاجی لو
j_hajilou@tabrizu.ac.ir
2
دانشگاه تبریز
AUTHOR
فرهنگ
رضوی
razavi.farhang@znu.ac.ir
3
دانشگاه زنجان
AUTHOR
1- Abassi N.A., Kushad M.M., and Endress A.G. 1998. Active oxygen-scavenging enzymes activities in developing apple flowers and fruits. Scientia Horticulturae, 74: 183–194.
1
2- Abedi B., Tafazoli E., Rahemi M., Khaladbarin B., and Ganji A. 2010. Changes in sugars, starch, proline and intercostal water in the face of cold in some apricot cultivars (armeniaca Prunus L.). Iranian Journal of Horticulture, 41(4): 375–382. (In Persian)
2
3- Alburquerque N., Garcıa-Montiel F., Carrillo A., and Burgos L. 2008. Chilling and heat requirements of sweet cherry cultivars and the relationship between altitude and the probability of satisfying the chill requirements. Environmental and Experimental Botany, 64: 162 – 170.
3
4- Allen R.D., Webb R.P., and Schake S.A. 1997. Use of transgenic plants to study antioxidant defenses. Free Radical Biology and Medicine, 23:473–479.
4
5- Angelini R., and Frederico R. 1989. Histochemical evidence of polyamine oxidation and generation of hydrogen peroxide in the cell wall. Journal of Plant Physiology, 135: 212–217.
5
6- Bartollini S., Vitti R., and Zanol J. 2004. The involvement of glutathione in flower bud dormancy overcoming in apricot. Research Signpost, 1: 11– 28.
6
7- Bassi D., Vitti R., and Bartolini S. 2006. Recent advances on environmental and physiological challenges in apricot growing. Agricultural Science, 717: 23– 31.
7
8- Bates L.S., Waldren R.P., and Teare I.D. 1973. Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant and soil, 39:205–207.
8
9- Bowler C., Montagu M.V., and Inze D. 1992. Superoxide dismutase and stress tolerance. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 43:83–116.
9
10- Dennis F.G. 2003. Problem in standardizing methods for evaluating the chilling requirement for the breaking of dormancy in buds of woody plants. HortScience, 3: 347–350.
10
11- Dirk I., and Montago M.V. 2002. Oxidative Stress in Plants. Journal of Research Science, 14:177-186.
11
12- Ebdali l. 2012. Evaluation of oxidative metabolism in flower buds of Prunus armeniaca after the developmental period during the cold season. Faculty of Natural Sciences, Tabriz University. Tabriz. Master's Thesis. (In Persian)
12
13- Felker F.C., and Robitaille H.A. 1985. Chilling accumulation and rest of sour cherry flower buds. Journal of the American Society of Horticultural Science, 110(2): 227-232.
13
14- Fridovich I. 1988. The biology of oxygen radicals: general concepts. p. 145–160. In Halliwell B (ed.) Oxygen radicalsand tissue injury. Journal of the American Society of Horticultural Science.
14
15- Fuchigami L.H., and Nee C. 1987. Degree growth stage model and restbreaking mechanisms in temperate woody perennials. HortScience, 22:836–845.
15
16- Ghamsari L., Keyhani E., and Golkhoo Sh. 2007. Kinetics Properties of Guaiacol Peroxidase Activity in Crocus sativus L. Corm during. Rooting Iranian Biomedical Journal, 11(3): 137–146.
16
17- Guerriero R., Viti R., and Monteleone P., 2006. Evaluation of end of dormancy several apricot cultivars according to different methodological approaches. Acta Horticulturae, 701: 99–103.
17
18- Hamrahi S., Habibi D., Madani H., and Mashhadi M., 2008. Cycocel effect on enzymes and micro-nutrients anti as indices of oxidant stress resistance in oilseed rape. The new data agricultural, 3: 2–14
18
19- Hare P.D., and Cress, W.A. 2004. Implications of stress induced proline accumulation in plant. African Journal of Biotechnology, 9(7): 1008–1015.
19
20- Hussain S., Liu G., Liu D., Ahmed M., Hussain N., and Teng Y. 2015. Study on the expression of dehydrin genes and activities of antioxidative enzymes in floral buds of two sand pear (Pyrus pyrifolia Nakai) cultivars requiring different chilling hours for bud break. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 39(6):930–939.
20
21- Jogaiah S., Maske S.R., and Upadhyay, A. 2015. Rootstock induced changes in enzymes activity and biochemical constituents during budbreak in ‘Thompson Seedless’ grapevine. Vitis, 53(2): 57–64.
21
22- Kang, H.M., and Saltveit M.E., 2002. Effect of chilling on antioxidant enzymes and DPPH-radical scavenging activity of high- and low-vigour cucumber seedling radicles. Plant, Cell and Environment, 25: 1233–1238.
22
23- Khanizadeh S., Brodeur C., Granger R., and Buszard D. 2000. Factor associated with winter injury to apple trees. International Society for Horticultural Science, 514(20):179–192.
23
24- Lassheen A.M., and Chaplin C.E. 1971. Biochemical Comparison of Seasonal Variations in three peach cultivars differing in cold hardiness. Journal of American Society for Horticultural Science, 96(2): 212–222.
24
25- Mansouri Deh Shoeybi R., Davari Nejad Gh., Hokmabadi H., and Tehranifar, A. 2011. Evaluation of changes in proline, total protein and soluble sugars during phenological stages of flower buds of Pistachio cultivars. Journal of Horticultural Science, 25(2): 116–121. (in Persian)
25
26- Mathe C, Barre A, Jourda C and Dunand C .2010. Evolution and expression of class III peroxidases. Archives of Biochemistry and Biophysics. 500(1):58–65.
26
27- Monk L.S., Fagerstedt K.V., and Crawford R.M. 1989. Oxygen toxicity and superoxide dismutase as an antioxidant in physiological stress. Physiol Plant, 76: 456–459.
27
28- Nir G., Shulman Y., Fanberstein L., and Lavess S. 1986. Changes in the activity of catalase (EC1.11.1.6) in relation to the dormancy of grapevine (Vitis vinifera L.) buds. Plant Physiology, 81: 1140–1142.
28
29- Pakkish Z, Rahemi M and Baghizadeh A .2009. Seasonal caange of peroxidase, polyphenol oxidase enzymes activity and phenol content during and after rest in Pistachio flower buds. World applied Science Journal. 6: 1193–1199.
29
30- Razavi F., Haji-lou J., and Tabatabaii S.J. 2011. Determination of the heat and chill requirements of flower buds in some peach cultivars (Prunus persica L.). Journal of Horticultural Science, 26(1): 17–24. (in Persian)
30
31- Richardson E.A., Seeley S.D., and Walker D.R .1974. A model for estimating the completion of rest for Redhaven and Elberta peach trees. HorstScience, 9:331–332.
31
32- Rohde A., and Bhalerao R.P. 2007. Plant dormancy in perennial context. Trends Plant Science, 12: 217–223.
32
33- Ruiz D., Campoy J.A., and Egea J. 2007. Chilling and heat requirements of apricot cultivars for flowering. Environmental and Experimental Botany, 61:254 – 263.
33
34- Saure M.C. 1985. Dormancy release in deciduous fruit tress. Horticultural Reviews, 7:239–300.
34
35- Szabados L., and Arnould S. 2009. Proline: a multifunctional amino. Plant Science, 15:89–97.
35
36- Toupchizade Tabrizian S. 2014. Evaluation of some physiological and enzymatic changes in some apricot cultivars during flower bud dormancy. Faculty of Agriculture, Tabriz University. Tabriz. Master's Thesis.
36
37- Viti R., Bartollini S., and Guerrirro R. 2003. The influence of sampling from different canopy positions on the evaluation on flower bud anomalies and dormancy in apricot. Fruits, 58: 117–126.
37
38- Wang C.Y. 1991. Chilling injury of Horticultural Crops. US Department of Agriculture, Beltsville, Maryland.
38
39- Wang S., Jiao H., and Faust M. 1995. Changes in ascorbate, glutatation and related enzymes activity during thidiazuron indused bud break of apple. Physiologia plantarum, 82:231–236.
39
40- Yordanova R., Christork K., and Popora L.P. 2003. Antioxidative oenzymes in barley plants subjected to soil flooding. Environmental and Experimental Botany, 51: 93- 101.
40
41- Zhang Z., Huber D., and Rao J. 2013. Antioxidant systems of ripening avocado (Persea americana Mill.) fruit following treatment at the preclimacteric stage with aqueous 1-methylcyclopropene. Postharvest Biology and Technology, 76: 58–64.
41
42- Zhi-You Y., Xia L., Ling-Hao L., Xing-Guo., and Tian-Li Y. 2003. Effects of temperature and sevsral chemicals on metabolic changes during dormancy release in NJ72 nectariane. Agricutural Sciences in China, 2:549–555.
42
43- Zolfaghari R., Hosseini S.M., and Korori S.A.A. 2005. Relationship between peroxidase and catalase with metabolism and environmental factors in Beech (Fagus orientalis L.) in three different elevations. International journal of environmental sciensic, 1 (2): 22–25.
43
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین زمان برداشت مناسب و قابلیت انبارمانی تعدادی از ارقام و ژنوتیپهای امیدبخش ”به“ (Cydonia oblonga Mill.) در شرایط سردخانه
نتیجه شناسایی و جمعآوری ژنوتیپهای ”به“ در استان اصفهان، دستیابی به ژنوتیپهای امیدبخش”به“ بوده است. با توجه به اینکه ارزیابی خصوصیات انبارمانی و تعیین میزان مقاومت به نابسامانیهای پس از برداشت در محصولات باغی از اهمیت وافری برخوردار است، این تحقیق با هدف تعیین مناسبترین زمان برداشت و بررسی طول دوره انبارمانی برخی ژنوتیپهای امیدبخش ”به“ حاصل از جمعآوری ژرمپلاسم انجام گرفت. به این منظور میوههای ارقام ”به“ ویدوجا و ”به“ اصفهان به همراه ژنوتیپهای KVD2 و KVD4 به عنوان ژنوتیپهای امیدبخش در تاریخهای 15، 23 و 30 مهر ماه سال 1395 از ایستگاه تحقیقات مبارکه برداشت شدند. میوهها به سردخانه با دمای 1±0 درجه سانتیگراد و رطوبت نسبی 5±90 درصد منتقل گردیدند. صفات مورد ارزیابی در زمان برداشت و نیز در فواصل یک ماهه به مدت پنج ماه پس از نگهداری در سردخانه طی آزمایش فاکتوریل در پایه طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار و 10 میوه در هر تکرار مورد ارزیابی قرار گرفتند. طبق نتایج، بیشترین کاهش وزن در ماه پنجم انبارمانی دیده شد. در این ماه، ”به“ اصفهان و ویدوجا به ترتیب بیشترین و کمترین درصد کاهش وزن را نشان دادند. بیشترین مواد جامد محلول و شاخص طعم در برداشت سوم و ماه پنجم و چهارم انبارمانی دیده شد. بیشترین شاخص طعم متعلق به ”به“ اصفهان و ویدوجا بود. بیشترین سفتی بافت میوه در زمان برداشت برای ”به“ اصفهان و ژنوتیپ KVD2 و کمترین آن برای ژنوتیپ KVD4 و پس از پنج ماه انبارمانی به دست آمد. ژنوتیپ KVD4 در زمان برداشت، بیشترین و ”به“ اصفهان، ویدوجا و KVD2 پس از انبارمانی پنج ماهه کمترین محتوای فنول کل را نشان دادند. ژنوتیپ KVD4 و ”به“ اصفهان در زمان برداشت بیشترین محتوای پکتین را نشان دادند. افزایش دوره انبارمانی مقدار پکتین و فنول را کاهش داد. قهوهای شدن سطحی از ماه چهارم انبارمانی آغاز شد و اختلاف معنیداری با مقدار این صفت در ماه پنجم نداشت. در نهایت بهترین زمان برداشت برای ارقام و ژنوتیپهای اصفهان، ویدوجا، KVD2 و KVD4 به ترتیب 185، 200، 200 و 193 روز پس از تمام گل بود. نگهداری میوه ارقام ”به“ اصفهان و ویدوجا و ژنوتیپ KVD4 به مدت چهار ماه و میوه ژنوتیپ KVD2 به مدت پنج ماه در سردخانه قابل توصیه است.
https://jhs.um.ac.ir/article_37096_f658a175fbb775e9ef452f97f0f601cb.pdf
2020-02-20
639
653
10.22067/jhorts4.v33i4.74752
پس از برداشت
قهوه ای شدن سطحی
پکتین
محتوای فنل
مریم
تاتاری
mtatari1@gmail.com
1
مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی اصفهان
LEAD_AUTHOR
مهرداد
محلوجی
mmahlooji2000@yahoo.com
2
مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی اصفهان
AUTHOR
ابراهیم
قربانی
mtatari1@yahoo.com
3
مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی اصفهان
AUTHOR
1- Abdollahi H. 2012. Evaluation of productive and vegetative traits an compatibility of new cultivars and genotypes of quince. Final Report of Research Project. Seed and Plant Improvement Institute, Karaj, Iran 165p. (in Persian with English abstract)
1
2- Alipour M., Abdollahi H., Abdousi V., Ghasemi A., Adli M., and Mohammadi M. 2014. Evaluation of vegetative and reproductive characteristics and distincness of some quince (Cydonia oblonga Mill.) genotypes from different regions of Iran. Seed and Plant Improvement Journal, 3: 507-529.
2
3- Amiot M.J., Tacchini M., Aubert S., and Nicolas J. 1992. Phenolic composition and browning susceptibility of various apple cultivars at maturity. Food Science, 57: 958-962.
3
4- Amodio M.L., Colelli G., Hasey J.K., and Kader A.A. 2007. A comparative study of composition and postharvest performance of organically and conventionally grown kiwifruits. Journal of the Science of Food and Agriculture, 87: 1228-1236.
4
5- Angelov T. 1975. Studies on fruit respiration in some quince cultivars with reference to determining the optimal harvesting date. Gradinarska I Lozarska Nauka, 12: 11-18.
5
6- Ardekani E., Davari Nezhad G.H., and Azizi M. 2013. Effect of foliar application of salicylic acid before harvest on shelf life, quality in post harvest and antioxidant activity in apricot cv. Nouri. Journal of Horticultural Science, 26: 448-459. (in Persian with English abstract)
6
7- Ashour Nezhad M., Ghasemnezhad M., Aghajanzadeh S., Fattahi Moghadam J., and Bakhshi D. 2013. Evaluation of storage life and postharvest quality of kiwifruit cv, 'Hayward' fruits produced in conventional and organic agricultural systems. Journal of Agricultural Science and Sustainable production, 22: 1-12. (in Persian with English abstract).
7
8- Awad M.A., and De Jager A. 2000. Flavonoid and chlorogenic acid changes in skin of ‘Elstar’ and ‘Jonagold’ apples during and after regular and ultra low oxygen storage. Postharvest Biology and Technology, 20: 15-24.
8
9- Ayfer M., Koksal A., Celik M., Kaynak L., and Turk R. 1983. Researches on the cold storage conditions of the quince. Symposium of the storage, market preparation and delivery of the products in Turkey. TUBITAK, p. 48-57.
9
10- Brown B.I. 1989. Temperature management and chilling injury of tropical and subtropical fruit. Acta Horticulturae, 175: 339-342.
10
11- Burdon J., and Clark C. 2001. Effect of postharvest water loss on ‘Hayward’ kiwifruit water status. Postharvest Biology and Technology, 22: 215-225.
11
12- Chen J.L., Yan S., Feng Z., Xiao L., and Hu X. S. 2006. Changes in the volatile compounds and chemical and physical properties of ‘Yali’ pear (Pyrus bertschneideri Rehd) during storage. Food Chemistry, 97: 248-255.
12
13- Crisosto C.H., Garner D., and Saez K. 1999. Kiwifruit Postharvest Quality Maintenance Guidelines. Central Valley Post harvest Newsletter, 8: 1-11.
13
14- Elgar H.J., Watkins C.B., and Lalu N. 1999. Harvest date and crop load effects on a carbon dioxiderelated storage injury of ‘Braeburn’ apple. Horticultural Science, 2: 305-309.
14
15- Eshghi M., Hajnajari H., Kalantari S., Damyar S., and Rasouli V. 2011. Changes in physical and biochemical traits in native summer-ripening apple cultivars during cold storage. Journal of Agricultural Engineering Research, 1: 59-70. (in Persian with English abstract)
15
16- Etienne A., Genard M., Lobit P., Mbeguie-A-Mbeguie D., and Bugaud C. 2013. What controls fleshy fruit acidity? A review of malate and citrate accumulation infruit cells. Journal of Experimental and Botany, 64: 1451-1469.
16
17- Farooq R.A., and Khan I. 2012. Physico- chemical quality of apple cv. Gala fruit stored at low temprature. FUUAST Journal of Biology, 2: 103-107.
17
18- Franck C., Lammertyn J., Ho Q.T., Verboven P., Verlinden B., and Nicolai B.M. 2007. Browning disorders in pear fruit. Postharvest Biology and Technology, 43: 1-13.
18
19- Ghafir S., Gadalla S., Murajei B., and El-Nady M. 2009. Physiological and anatomical comparison between four different apple cultivars under cold-storage conditions. African Journal of Plant Science, 3: 133-138.
19
20- Ghasemi A. 2002. Collection and identification of different quince genotype (Cydonia oblonga Mill.) in Isfahan province. Final Report of Research Project. Agriculture and Natural Resources Research Center of Isfahan, Iran 123p. (in Persian with English abstract)
20
21- Gorji Chakespari A., and Mobli H. 2010. Post harvest physical and nutritional properties of two apple varieties. Journal of Agricultural Science, 2:61-68.
21
22- Gunes N.T., Dumanoglu H., and Poyrazoglu E.S. 2012. Use of 1-MCP for keeping postharvest quality ok Ekmek quince fruit. Acta Horticulturae, 1: 297-302.
22
23- Halinska A., and Frenkel C. 1991. Acetaldehyde stimulation of net gluconeogenic carbonmovement from applied malic acid in tomato fruit pericarp tissue. Plant Physiology, 3: 954-960.
23
24- Harker F.R., Feng J., Johnston J.W., Gamble J., Alavi M., Hall M., and Chheang S.L. 2019. Influence of post-harvest water loss on apple quality: The use of a sensory panel to verify destructive and non-destructive instrumental measurements of texture. Postharvest Biology and Technology, 148: 32-37.
24
25- Harker F.R., Redgwell R.J., Hallet I.C., Murray S., and Carter G. 1997. Texture of freshfruit. Horticultural Review, 20: 212-224.
25
26- Hoseini Farahi M., Aboutalebi A., and Panahi Kord Laghari K.H. 2008. Study on fruit firmness changes in Golden and Golden Delicious apple cultivars, post harvest in attention to rootstock type, cultivar and calcium chloride treatment. Journal of Agronomy and Horticulturae (Pajouhesh and Sazandegi), 1: 74-79.
26
27- Hudina M., and Stampar F. 2004. Free sugar and sorbitol content in pear (Pyrus communis L.) cv. Williams during fruit development using different treatment. Acta Horticulturae, 576: 279-288.
27
28- Kalt W. 2005. Effects of production and processing factors on major fruit and vegetable antioxidants. Journal of Food Science, 70: 11-19.
28
29- Khosh Ghalb H., Arzani K., Malakouti M.J., and Barzegar M. 2008. Changes of sugars and organic acids contents in two Asian pear cultivars (Pyrus serotina Rehd.) during fruit development and postharvest storage and its effect on fruit shelf life, quality and internal browning disorder. Journal of Water and Soil Science, 12:193-204. (in Persian with English abstract)
29
30- Konopacka D., and Płocharski W.J. 2002. Effect of picking maturity, storage technology and shelf life on changes of apple firmness of 'Elstar', 'Jonagold' and 'Gloster' cultivars. Journal of Fruit and Ornamental Plant Research, 10: 11-22.
30
31- Kovacs E., and Meresz P. 2004. The effect of harvesting time on the biochemical and ultrastructural changes in Idared apple. Acta Alimentaria, 33: 285.296.
31
32- Kupferman E., Spotts R., and Sugar D. 1995. Practices to reduce postharvest pear diseases. Tree Fruit Postharvest Journal, 6: 18-23.
32
33- Kuzucu F., and Sakaldas M. 2008. The effects of different harvest times and packaging types on fruit quality of Cydonia oblonga cv. Esme. Journal of Agricultural Faculty HR. U. 3: 33-39.
33
34- Kvikliene N., and Valiuskaite A. 2009. Influence of maturity stage on fruit quality during storage of ‘Shampion’ apples. Scientific Works of the Lithuanian Institute of Horticulture and Lithuanian University of Agriculture. Sodininkyste Ir Darzininkyste, 3: 117-123
34
35- Lemoine M.L., Civello P.M., Martınez G.A., and Chaves A.R. 2007. Influence of postharvest UV-C treatment on refrigerated storage of minimally processed broccoli (Brassica oleracea var. Italica). Journal of the Science of Food and Agriculture, 87: 1132-1139.
35
36- Lin Y.F., Lin H.T., Lin Y.X., Zhang S., Chen Y.H., and Jiang X.J. 2016. The roles of metabolism of membrane lipids and phenolics in hydrogen peroxide-induced pericarp browning of harvested longan fruit. Postharvest Biology and Technology, 111: 53-61.
36
37- Maniei A. 1995. Planting to harvest of pear and quince. Technical publication Iran 113p. (in Persian with English abstract).
37
38- Mohebi M., Babalar M., Askari M.A., Talaei A., and Barker A.V. 2017. Effects of harvest date on apple fruit quality at harvesting and after cold storage. International Journal of Horticultural Science and Technology, 4: 21-27.
38
39- Mosharaf L., and Ghasemi A. 2004. Effect of harvesting time to increase the storage life of Isfahan quince cultivar. Journal of Sciences and Technology of Agriculture and Natural Resources, 2: 181-189. (in Persian with English abstract)
39
40- Nikkhah S.H. 2011. Effect of harvesting time and sodium chloride concentration on storage quality of Spadona and Koshia pear cultivars.Horticultural Science Journal, 3: 243-250.
40
41- Nikkhah S.H., and Ghanji Moghadam E. 2006. Maintenance of qualitative and quantitative characteristics of Gorton quince cultivar using Thiabendazole fungicide. 4th Congress of Horticultural Science, Mashhad, Iran.
41
42- Paniagua C., Pose S., Morris V.J., Kirby A.R., Quesada M.A., and Mercado J.A. 2014. Fruit softening and pectin disassembly: an overview of nanostructural pectin modifications assessed by atomic force microscopy. Annals of Botany, 114: 1375-1383.
42
43- Pasquariello M.S., Rega P., Migliozzi T., Capuano L.R., Scortichini M., and Petriccione M. 2013. Effect of cold storage and shelf life on physiological and quality traitsof early ripening pear cultivars. Scientia Horticulturae, 162: 341-350.
43
44- Raese J.T., and Drake S.R. 2000. Effect of calcium sprays, time of harvest, cold storage and ripeness on fruit quality of ‘Anjou’ pears. Journal of Plant Nutrition, 23: 843-853.
44
45- Rasoulzadegan Y. 1992. Tree growing in temperate regions. Publication of Isfahan University of Technology, 756p. (in Persian with English abstract)
45
46- Rahemi M., and Akbari H. 2004. The effects of thermal treatment and type of packaging on quality and storage period of quince fruit. Journal of Horticultural Science and Technology, 4: 72-83. (in Persian with English abstract)
46
47- Singleton V.L., and Rossi J.A. 1965. Colorimetry of total phenolics with phospho- molybdic-phospho- tungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture, 16: 144-158.
47
48- Soska A., and Tomala K. 2006. Internal quality of apples during storage. AGRONOMIJAS VESTIS (Latvian Journal of Agronomy), 9: 146-151
48
49- Thakur B.R., Singh R.K., and Nelson P.E. 1996. Quality Attributes of processed tomato Products. Food Reviews International, 3: 357-401.
49
50- Valero D., and Serrano M. 2010. Postharvest biology and technology for preserving fruit quality. CRC-Taylor and Francis, Boca Raton, USA.
50
51- Weibel F., Widmer F., and Husistein A. 2004. Comparison of production systems: integrated and organic apple production. Part III: Inner quality: composition and sensory. Schweizer Zeitschrift für Obst- und Weinbau, 140: 10-13.
51
52- Zhang L., Wang J., Zhou B., Li G., Liu Y., Xia X.L., Xia Z., Lu F., and Ji S. 2019. Calcium inhibited peel browning by regulating enzymes in membrane metabolism of ‘Nanguo’ pears during post-ripeness after refrigerated storage. Scientia Horticulturae, 244 :15-21.
52
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تاثیر روشهای مختلف خشککردن بر زمان خشکشدن و برخی خصوصیات فیتوشیمیایی شمعدانی عطری (Pelargonium graveolens)
خشککردن یکی از مهمترین فرآیندهای پس از برداشت گیاهان دارویی است. در این پژوهش بهمنظور بررسی تأثیر روشهای مختلف خشککردن بر گیاه دارویی شمعدانی عطری، آزمایشی بر پایه طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار و 12 تیمار اجرا شد. تیمارهای مورد آزمایش شامل خشککردن در ماکروویو (توان 300، 600 و 900 وات)، خشک کردن در آون (دمای 45، 55 و 65 درجه سانتیگراد)، خشک کردن طبیعی (خشککردن در سایه محصور اتاق، سایه هوای آزاد، 5 ساعت آفتاب و سپس انتقال به سایه، 10 ساعت آفتاب و سپس انتقال به سایه، و آفتاب کامل) و نمونه گیاهی تازه (بهعنوان شاهد) بودند. در روشهای مختلف خشککردن، کاهش وزن نمونهها تا رسیدن محتوای رطوبت به 12 درصد (بر پایه ماده خشک گیاهی) ادامه یافت. نتایج تجزیه واریانس نشاندهنده تاثیر معنیدار روشهای مختلف خشککردن بر زمان خشککردن، فنل کل، فلاونوئید کل، فعالیت آنتیاکسیدانی با دو روش دیپیپیاچ و افآراِیپی و محتوای اسانس بود. کمترین و بیشترین زمان خشککردن (05/4 دقیقه و 6 روز) بهترتیب مربوط به تیمارهای خشککردن با توان 900 وات ماکروویو و خشککردن در سایه هوای آزاد بود. بالاترین محتوای فنل کل (78/14 میلیگرم گالیک اسید در صد گرم ماده خشک) و فلاونوئید کل (83/12 میلیگرم کوئرستین در صدگرم ماده خشک) بهترتیب در تیمار سایه محصور و سایه هوای آزاد و بیشترین ظرفیت آنتیاکسیدانی (02/1IC50=) در نمونه تازه مشاهده گردید. همچنین گیاهان خشکشده در آون با دمای 45 درجه نیز از نظر فنل کل، فلاونوئید کل و فعالیت آنتیاکسیدانی غنی بودند. در حالیکه نمونههای خشکشده در سه توان ماکروویو و نمونههای خشکشده در آفتاب کامل کمترین میزان را برای این صفات نشان دادند. بالاترین محتوای اسانس (2/0 درصد وزنی/وزنی بر پایه ماده خشک گیاهی) نیز در تیمار خشککردن در آون با دمای 45 درجه مشاهده گردید. بهطور کلی میتوان گفت که خشککردن در دماهای بالای آون و توانهای بالای ماکروویو باعث کاهش میزان ترکیبات فنولی و فلاونوئید، فعالیت آنتیاکسیدانی و درصد اسانس شمعدانی عطری گردید. در حالیکه روشهای خشککردن در سایه محصور، سایه هوای آزاد و آون با دمای 45 درجه، کمترین کاهش را در این صفات نسبت به نمونه گیاه تازه نشان دادند.
https://jhs.um.ac.ir/article_37107_af6cefdb7f9fe6f32c334da3932421c4.pdf
2020-02-20
655
668
10.22067/jhorts4.v33i4.76354
شمعدانی عطری
خشک کردن
فنول کل
فلاونوئید کل
فعالیت آنتی اکسیدانی
حسن
مومیوند
hmumivand@gmail.com
1
دانشگاه لرستان
LEAD_AUTHOR
عبدالحسین
رضایی نژاد
rezaeinejad.h@lu.ac.ir
2
دانشگاه لرستان
AUTHOR
شیرین
تقی پور
sh.tagipor@yahoo.com
3
دانشگاه لرستان
AUTHOR
کبری
سپهوند
kobra_sepahvand@yahoo.com
4
دانشگاه لرستان
AUTHOR
بهنام
مرادی
blue_garden1000@yahoo.com
5
دانشگاه لرستان
AUTHOR
1. Afrasian D. and Ozcan, M.M. 2008. Evaluation of drying methods with respect to drying rosemary leaves. Energy Con. Mana. J. 49: 5.1258-1264. Agriculture and Food Chemistry, 48: 1485- 1490.
1
2. Al- Farsi M., Alasalvar C., Morris A., Baron M. and Shahidi F. 2005. Comparison of antioxidant activity, anthocyanins, carotenoids, and phenolics of three native fresh and sun-dried date (Phoenix dactylifera L.) varieties grown in Oman. Food Chemistry, 53: 1752-9.
2
3. Arabhosseini A., Padhye S., Beek T.A., Boxtel A.J., Huisman W., Posthumus M.A. and Müller J. 2006. Loss of essential oil of tarragon (Artemisia dracunculus L.) due to drying. Journal of the Science of Food and Agriculture, 86 (15): 2543–2550.
3
4. Arslan D., Ozcan M.M., and Okyay Menges H. 2010. Evaluation of drying methods with respect to drying parameters, some nutritional and colour characteristics of peppermint (Mentha × piperita L.). Energy Conver and Manage, 51: 2769- 2775.
4
5. Ayyobi H., Peyvast G.A. and Olfati J.A., 2014. Effect of drying methods on essential oil yield, total phenol content and antioxidant capacity of peppermint and dill. Ratarstvo i povrtarstvo - Journal on Field and Vegetable Crops Research, 51 (1): 18–22.
5
6. Azizi M., Rahmati M., Ebadi T. and Hasanzadeh Khayyat M. 2009. The effects of different drying methods on weight loss rate, essential oil and chamazolene contents of chamomile (Matricaria recutita) flowers. Iranian Journal Of Medicinal and Aromatic Plants, 25(2): 182-192. (In Persian).
6
7. Benzie IFF. and Strain JJ .1996. The ferric reducing agent of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: The FRAP assay. Analytical Biochemistry. 239:70-76.
7
8. Besbes S., Blecker C., Deroanne C., Bahloul N., Lognay G. and Drira N. E. 2004. Date seed oil: phenolic, tocopherol and sterol profiles. Journal Food Lipids, 11: 251- 5.
8
9. Brovelli E.A., Li Y. and Chui, K. 2003. Image analysis reflects drying conditions of Echinacea purpurea Herb. Journal of Herbs Spices and Medicinal Plants. 10: 2.19-24.
9
10. Capecka E., Marecczek A., and Leja M. 2005. Antioxidant activity of fresh and dry herbs of some Lamiaceae species. Food Chemistry, 93: 223- 226.
10
11. Choi CW., Kim SC., Hwang SS., Choi BK., Ah HJ., Lee MY., Park SH. and Kim, SK .2002. Antioxidant activity and free radical scavenging capacity between Korean medicinal plants and flavonoids by assay-guided comparison. Plant Science. 163:1161-1168.
11
12. Duchow S., Blaschek W., Classen B. 2015. Reproduction of medicinal plant Pleargonium sidoides via somatic embryogenesis. Planta Medica, 81(12-13): 1169-74.
12
13. Ebadi M. T., Rahmati M., Azizi M. and Hassanzadeh Khayyat, M. 2009. Effect of different drying methods (natural, oven and microwave) on drying time, percentage and essential oil components medicinal herbs (Satureja hortensis L.). Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plant, 26 (4): 477-489.
13
14. Gao X., Bjok L., Trajkovski V. and Uggla M. 2000. Evaluation of antioxidant activities of rosehip ethanol extracts in different test systems. Journal Agriculture and Food Chemistry, 80: 2021- 7.
14
15. Garcia-Salas P, Morales-Soto A, Segura-Carretero A, Fernandez-Gutierrez A .2010. Phenolic-compound extraction systems for fruit and vegetable samples. Molecules 15:8813-8826.
15
16. Hamrouni Sellami I., Zohra rahali F., Bettaieb Rebey I., Bourgou S., Limam F., and Marzouk B. 2012. Total phenolics, flavonoids, and antioxidant activity of sage (Salvia officinalis L.) plants as affected by different drying methods. Food Bioprocess Technology, 5: 2978–2989.
16
17. Harboune N., Marete E., Jacquier J.C., and O’Riordan D. 2009. Effect of drying methods on the phenolic constituents of meadow sweet (Filipendula ulmaria) and willow (Salix alba). Food Chemistry, 42(9): 1468- 73.
17
18. Hassanzadeh K., Hemmati Kh. and Mehdi Pour, M .2018. The effect of different drying methods (natural and oven) on the drying time and some secondary metabolites of Melissa (Melissa officinalis L.). Journal of Plant Production Research, 25(1), 143-137.
18
19. Karimian Z., Keramat A. 2014. Flushing Caused by menopause and herbal medicine in Iran. A systematic review, Women's Magazine, Midwifery and Infertility, 17: 1-11.
19
20. Lalli JYY, Van Zyl RL., Van Vuuren SF., Viljoen AM .2008. In vitro biological activities of South African Pelargonium (Geraniaceae) species. South African Journal of Botany, 74: 153-157.
20
21. Lewicki P.P. and Pawlak G. 2003. Effect of drying on the microstructure of plant tissue. Drying Technology. 12 (4), 657-683.
21
22. Martinov M., Oztekin S. and Muller J. 2007. Medicinal and aromatic crops. CRC Press, United States of America, 320 p.
22
23. Mir Mostafaei S., Azizi M., Bahraini M., Aryani M and Arrowhead F.2013. The effect of different drying methods on the rate weight loss, and microbial oils of Mentha (Mentha piperita L.), Plant Production Research Journal, Vol. 20, No. 4.
23
24. Nicoli M.C., Anese M., and Parpinel M. 1999. Influence of processing on the antioxidant properties of fruits and vegetables. Trends in Food Science and Technology, 10: 94- 100.
24
25. Piga A., Del Caro A., Corda G. 2003. From plums to prunes: influence of drying parameters on polyphenols and antioxidant activity. Journal Agricultural and Food Chemistry, 51: 3675- 3681.
25
26. Probhanjan D.G., Ramaswamy H.S. and Raghavan G.S., 1995. Microwave assisted convective air drying of thin layer carrots. Journal of Food Engineering, 25: 283-293.
26
27. Quettier-Deleu C, Gressier B, Vasseur J, Dine T, Brunet C, Luyckx M, Cazin M, Cazin J-C, Bailleul F, and Trotin F .2000. Phenolic compounds and antioxidant activities of buckweat hulls and flour. Journal of Ethnopharmacology, 72:35-42.
27
28. Rakic S, Petrovic S, Kukic J, Jadranin M, Tesevic V, Povrenovic D, et al. 2007. Influence of thermal treatment on phenolic compounds and antioxidant properties of oak acorns from Serbia. Food Chem; 104: 830-4.
28
29. Riva, M., Schirarldi, A. and Cesare, L., 1991. Drying of Agaricus bisporus mushrooms by microwave/hot.
29
30. Rozdar F, Azizi M., Ghani A. and Davari Nejad CH.M. 2014. Effect of different drying methods on drying time and some phytochemical properties of Mentha (Mentha piperita L.). Journal of Horticultural Science, 28(3): P. 407-415. (In Persian).
30
31. Shahdadi F., Mirzaie HA, Maghsadllo Y., Ghorbani. and Daraie garme khani A. 2011. Effect of drying process on the phenolic-compounds content and antioxidant activity of two varieties of date-palm fruit Kaluteh and Mazafati .(Phoenix ductylifera), Journal of Nutrition Sciences and food industry Iran, 6 (3): 67-74.
31
32. Soysal Y., Oztekin S., and Eren O. 2006. Microwave drying of parsley: modelling, kinetics, and energy aspects. Biosystems Engineer, 93(4): 403- 413.
32
33. Spanos GA, Wrolstad RE .1990. Influence of processing and storage on the phenolic composition of Thompson seedless grape juice. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 38:1565-1571
33
34. Tomas J.M.G., Boot K.J., Allen L.H., Allo-Meagher M. and Davis J.M. 2003. Elevated temperature and carbon dioxide effects on Soybean seed composition and transcript abundance. Crop Science, 43: 1548- 1557.
34
35. Tulasidas T.N., Raghavan G.S.V. and Norris E.R. 1993. Microwave and convective drying of grapes. Transactions of the ASABE, 36: 1861-1865.
35
36. Vega-Galvez A., Scala K.D., KLemus-Mondaca R., Miranda M., Lopez J. and Perez-Won M. 2009. Effect of airdrying temperature on physico-chemical properties, antioxidant capacity, colour and total phenolic content of red pepper (Capsicum annuum L. var. Hungarian). Food Chemistry, 117(4): 647- 53.
36
37. Zargari A. Iranian Medicinal Plants. 6th ed. Tehran: Tehran University; 1997. p. 243-5.
37
ORIGINAL_ARTICLE
نقش فرمولاسیونهای مختلف کودی بر گیاهچههای کشت بافتی ژربرا (Gerbera jamesonii) در مرحله سازگاری
در کشاورزی سنتی، عموماً غلظت بالایی از عناصر غذایی در اختیار گیاه قرار میگیرد و بخش اعظمی از آن از طریق آبشویی خارج شده و در دسترس گیاه قرار نمیگیرد. چنانچه بتوان با مدیریت صحیح، نیاز تغذیهای گیاه را مشخص نمود، میتوان کارایی مصرف کود را افزایش و همچنین از آلودگی زیست محیطی ناشی از مصرف بیش از حد کودهای شیمیایی در کشور جلوگیری نمود. بنابراین پژوهش حاضر با هدف افزایش راندمان مصرف کود از طریق انتخاب تیمار کودی بهینه و سطح مطلوب آن جهت سازگاری و رشد مناسب گیاهچههای کشت بافتی ژربرا انجام شد. در آزمایش اول تیمارهای کودی مختلف با نسبتهای متفاوت فسفر و پتاسیم (PK) در قالب طرح کاملاً تصادفی با 10 تکرار مورد ارزیابی قرار گرفت که نتایج حاکی از تاثیر مطلوب تیمار کودی گروه دو (با مقادیر 99/7 میلی مولار نیتروژن، 06/1 میلی مولار فسفر و 77/4 میلی مولار پتاسیم) بر پارامترهای رشدی گیاهچههای کشت بافتی ژربرا بود. در آزمایش دوم غلظتهای مختلف تیمار کودی گروه دوم (x5/0، x1 و x5/1) در قالب طرح کاملاً تصادفی با 15 تکرار مورد ارزیابی قرار گرفت تا سطح بهینه این تیمار کودی تعیین گردد. نتایج نشان داد که گیاهچههای رشد یافته تحت تیمار x5/1 کود گروه دوم، از شاخصهای رشدی مطلوبتری در مقایسه با دو تیمار دیگر برخوردار بودند و میانگینهای بالاتری را از لحاظ وزن خشک ریشه و شاخساره به خود اختصاص دادند. لذا به منظور سازگاری و رشد مطلوب گیاهچههای کشت بافتی ژربرا، تیمار کودی گروه دو با غلظت x5/1 توصیه میگردد.
https://jhs.um.ac.ir/article_37115_f544911045ef276e6bba3fbe1dd9f0ea.pdf
2020-02-20
669
683
10.22067/jhorts4.v33i4.78680
شاخصهای رشدی
غلظتهای مختلف تیمار کودی
نسبتهای مختلف NPK
نیاز تغذیهای گیاه
احمد
شریفی شریف آباد
ahmadsharifi66@yahoo.com
1
جهاد دانشگاهی خراسان رضوی
AUTHOR
سیده مهدیه
خرازی
ma_kh230@yahoo.com
2
جهاد دانشگاهی خراسان رضوی
LEAD_AUTHOR
صبا
نجاتی زاده
p.s.nejatie@gmail.com
3
دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
آزاده
خادم
akh.agri69@gmail.com
4
جهاد دانشگاهی خراسان رضوی
AUTHOR
مریم
مرادیان
maryam67moradian@gmail.com
5
جهاد دانشگاهی خراسان رضوی
AUTHOR
1. Amin, N., Sajid, M., Sajid, M., Qayyum, M.M., Shah, S.T. and Fazl-i-Wahid, R.S.H., 2015. Response of gerbera (Gerbera jamesonii) to different levels of phosphorus and potassium. International Journal of Biosciences, 7(4), pp.1-11.
1
2. Bellubbi, S.B., Kulkarni, B.S. and Patil, C.P., 2015. Effect of integrated nutrient management on growth and flowering of gerbera (Gerbera jamesonii L.) under naturally ventilated polyhouse condition. International Journal of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine, 1(1): 69-74.
2
3. Bres, W., Kozlowska, A. and Walczak, T., 2013. Effect of nutrient solution concentration on yield and quality of gerbera grown in perlite. Journal of Elementology, 18(4): 577-588.
3
4. CH, S.R.S. and Prabhakar, N., 2018. Effect of nutrient deficiencies on growth of gerbera through solution culture. International Journal of Agricultural Science and Research, 7(3): 247-252.
4
5. Chandra, S., Bandopadhyay, R., Kumar, R., and Chandra, R. (2010). Acclimatization of tissue cultured plantlets: from laboratory to land. Biotechnol Lett, 32:1199–1205.
5
6. Darwesh, R, S, S. (2015). Morphology, physiology and anatomy in vitro affected acclimatization ex vitro date palm plantlets: A Review. International Journal of Chemical, Environmental & Biological Sciences, 3(2): 183- 190.
6
7. FAOSTAT: Fertilizers by Product. https://knoema.com/FAORFBFP/faostat-fertilizers-by-product. Published by source: 28 March 2019.
7
8. floranceflora.com/wp-content/themes/codewave/GerberaGrowingManual.pdf.
8
9. Forde, B.G. and Clarkson, D.T., 1999. Nitrate and ammonium nutrition of plants: physiological and molecular perspectives. In Advances in botanical research, 30: 1-90. Academic Press.
9
10. Hahn, E.J., Jeon, M.W., and Paek, K.Y. 1999, August. Culture method and growing medium affect growth and flower quality of several Gerbera cultivars. In International Symposium on Growing Media and Hydroponics 548 (385-392).
10
11. Kacperska, I., 1985. Effect of quantity of NPK fertilizer doses on the yield of gerbera cv. Peter. Experimental Work of the Institute of Pomology and Floriculture. Ser. B-Ornamental Plants.
11
12. Karimi Afshar, A., Delshad, M., and Bablar, M. 2009. Study on the possibility of substituting nutrient solution with variable EC instead of nutrient solution with fixed EC in tomato aquaculture. Journal of Iranian Horticultural Science, 40 (2): 37-44 (In Persian).
12
13. Kavanova, M., Lattanzi, F.A., Grimoldi, A.A. and Schnyder, H., 2006. Phosphorus deficiency decreases cell division and elongation in grass leaves. Plant Physiology, 141(2): 766-775.
13
14. Khalaj, M., Kiani, Sh., Khosh Goftar Manesh, A., and Amoo Aghaei A., R. 2016. The effect of different commercial nutrient solutions on yield and quality of two gerbera (Gerbera jamesonii L.) cut flower cultivars grown in soilless culture system. Journal of Greenhouse Crop Science and Technology, 7 (4): 135-147 (In Persian).
14
15. Khalaj, M.A., M. Amiri and S.S. Sindhu. 2011. Response of different growing media on the growth and yield of gerbera (Gerbera jamesonii L.) in hydroponic open system. Indian journal of horticulture, 68(4): 583-586.
15
16. Kumar, S. and Kanwar, J.K. 2006. Regeneration ability of petiole, leaf and petal explants in gerbera cut flower cultures in vitro. Folia Horticulturae, 18: 57-64.
16
17. Ludwig, F., Fernandes, D.M., Mota, P.R. and Boas, R.L.V., 2013. Electrical conductivity and pH of the substrate solution in gerbera cultivars under fertigation. Horticultura Brasileira, 31(3): 356-360.
17
18. Ludwig, F., Fernandes, D.M., Mota, P.R. and Villas Boas, R.L., 2008. Macronutrientes em cultivares de gerbera sob dois niveis de fertirrigacao. Horticultura Brasileira, 68-73.
18
19. Maloupa E. and D. Gerasopoulus. 1999. Quality production of four cut gerberas in a hydroponic system of four substrates. Acta Horticulturae, 486: 433-438.
19
20. Marschner, H. 1995. Mineral nutrition of higher plants. Second Edition, Academic Press Inc. San Diego, CA 92101.
20
21. Mollassini, H., Banayi, A., Abdul Baghi, M., and Seil Seper, M. 2007. Optimal usage of macro elements in hydroponic culture of gerbera. The first technical workshop to improve water use efficiency by cultivating greenhouse crops. Karaj, October 18, 2007 (In Persian).
21
22. Morgan, L. 2006. Hydroponic strawberry production. Publisher: Suntec Ltd, 118 p.
22
23. Mota, P.R.D.A., Fernandes, D.M. and Ludwig, F., 2016. Development and mineral nutrition of gerbera plants as a function of electrical conductivity. Ornamental Horticulture, 22(1): 37-42.
23
24. Nascimento, J.G. 2018. Malhas coloridas de sombreamento e solucoes nutritivas de fertirrigacao na cultura da gerbera (Gerbera jamesonii) em ambiente protegido (Doctoral dissertation, Universidade de Sao Paulo).
24
25. Palanisami, l. Kannan, D., Rishu, S., Bhatt, S.S. and Abhay, S., 2015. Fertigation studies on Gerbera (Gerbera jamesonii Bolus ex Hooker F.) for growth and yield under cover in southern hills (Shevaroy). International Journal of Tropical Agriculture, 33(1): 31-36.
25
26. Paradikovic, N., Mustapic-Karlic, J., Teklic, T., Cesar, V., Vinkovic, T., Lisjak, M., Spoljarević, M. and Iljkic, D., 2008. The Role of Light Regime and Substrate in Photosynthetic Pigments, free Proline content and Flower Quality of Gerbera jamesonii L. Poljoprivreda (Osijek), 14(2),17-22.
26
27. Resh, H.M. 1991. Hydroponic food production: A Definitive Guidebook of Soilless Food Growing Methods, 3rd ed. Woodbridge Press Publishing Co., ISBN 0-88007-171-0, California, 462 pages.
27
28. Savvas D., V. Karagianni, A. Kotsiras, V. Demopoulos, I. Karkamisi, and P. Pakou. 2003. Interactions between ammonium and pH of the nutrient solution supplied to gerbera (Gerbera jamesonii) grown in pumice. Plant and Soil. 254: 393-402.
28
29. Savvas, D. and Gizas, G., 2002. Response of hydroponically grown gerbera to nutrient solution recycling and different nutrient cation ratios. Scientia Horticulturae, 96(1): 267-280.
29
30. Schwarz, D., van Iersel, M.W., Ingram, K.T. and KlAring, H.P., 2001. Nutrient solution concentration effects on growth and photosynthesis of tomato grown hydroponically. In Plant nutrition (pp. 432-433). Springer, Dordrecht.
30
31. Sirin, U. 2011. Effects of different nutrient solution formulations on yield and cut flower quality of gerbera (Gerbera jamesonii L.) grown in soilless culture system. African Journal of Agricultural Research 6(21): 4910-4919.
31
32. Sonneveld, C., Baas, R., Nijssen, H.M.C. and De Hoog, J., 1999. Salt tolerance of flower crops grown in soilless culture. Journal of Plant Nutrition, 22(6): 1033-1048.
32
33. Van Eerd, L. L. and Zanddstra, J. W. 2007. Enhancing sugar beet storage quality. University of Guelph Ridgetown Campus. Agriculture and Agri -Food Canada.
33
34. Vidal, I., L. Longeri, and J. M. Hetier. 1999. Nitrogen uptake and chlorophyll meter measurements in spring wheat, Nutr. Cycl. Agroecosyst. 55: 1–6.
34
35. Zgallai, H., K. Steppe, and R. Lemeur. 2006. Effects of different levels of water stress on leaf water potential, stomatal resistance, protein and chlorophyll content and certain anti oxidative enzymes in Tomato plants. Journal of Integrative Plant Biology, 48(6): 679-685.
35
36. Zheng, Y., Graham, T., Richard, S. and Dixon, M., 2004. Potted gerbera production in a subirrigation system using low-concentration nutrient solutions. Hort Science, 39(6), 1283-1286.
36
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر سطوح مختلف کود آلی جلبک دریایی بر شاخصههای رشد، عملکرد و میزان اسانس گیاه دارویی مرزه (Satureja hortensis L.)
تولید ارگانیک یکی از ارکان مهم صنعت گیاهان دارویی است و استفاده از کودهای آلی در این مبحث بسیار مورد توجه میباشد. امروزه عصاره جلبکهای دریایی به عنوان یک کود آلی به منظور افزایش عملکرد کمی و کیفی گیاهان دارویی و همچنین مقاومت به تنشهای محیطی استفاده میشود. مرزه یکی از گیاهان دارویی و ادویهای است که سطح زیر کشت بالایی در کشورمان جهت مصارف غذایی و دارویی دارد. به منظور بررسی اثر محلولپاشی غلظتهای مختلف کود آلی جلبک دریایی بر روی شاخصههای رشد، وزن تر و خشک اندام هوایی و ریشه، درصد و عملکرد اسانس گیاه مرزه، آزمایشی در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با 4 تیمار و 3 تکرار در مزرعه تحقیقاتی دانشکده کشاورزی دانشگاه تربیت مدرس در سال 1396 اجرا گردید. تیمارهای آزمایش شامل محلولپاشی سطوح مختلف غلظت کود جلبک دریایی شامل مقادیر صفر (شاهد)، 5/2، 5 و 10 میلیلیتر بر لیتر به میزان سه مرتبه در طول فصل رشد بود. نتایج حاصل از اندازهگیری متغیرهای رشدی نشان داد که غلظتهای مختلف کود جلبک دریایی استفاده شده در این آزمایش بر صفات تعداد شاخههای فرعی، وزن خشک اندام هوایی، وزن تر و خشک ریشه، طول و عرض برگ، ارتفاع بوته و شاخص اسپد در سطح احتمال یک درصد تاثیر معنیداری داشت. همچنین سطوح مختلف کود جلبک دریایی بر صفات وزن تر اندام هوایی، درصد و عملکرد اسانس در سطح احتمال 5 درصد تاثیر معنیداری داشت. مقایسه میانگینها نشان داد که بیشترین مقدار برای صفات تعداد شاخههای فرعی (44/35 عدد در بوته)، طول و عرض برگ (22/43 و 07/8 میلیمتر)، قطر ساقه (00/5 میلیمتر)، وزن تر و خشک ریشه (به ترتیب 17/15 و 42/6 گرم)، وزن تر و خشک اندام هوایی بوته (01/181 و 69/37 گرم)، شاخص اسپد (13/48) مربوط به تیمار کاربرد 10 میلیلیتر کود جلبک دریایی و کمترین آن مربوط به تیمار شاهد بود. همچنین بیشترین ارتفاع بوته (66/54 سانتی متر) و درصد و عملکرد اسانس به ترتیب به میزان 51/2 درصد و 28/6 گرم در متر مربع مربوط به تیمار 5 میلیلیتر کود جلبک دریایی بود. بهطور کلی و با در نظر گرفتن نتایج حاصل از این آزمایش میتوان عکسالعمل گیاه دارویی مرزه را به کاربرد کود آلی جلبک دریایی به ترتیب در سطوح 5 و 10 میلیلیتر در لیتر مثبت ارزیابی نمود و آن را در برنامه توصیه کودی کشاورزان قرار داد.
https://jhs.um.ac.ir/article_37123_8852d3b9fa0be1eb2b8378444d482e82.pdf
2020-02-20
685
696
10.22067/jhorts4.v33i4.78699
جلبک های دریایی
کود آلی
کشاورزی پایدار
گیاهان دارویی
مرزه
علی
رضایی
a.rezaei755@gmail.com
1
دانشگاه تربیت مدرس
AUTHOR
محمدتقی
عبادی
mtebadi@gmail.com
2
دانشگاه تربیت مدرس تهران
LEAD_AUTHOR
حسن
پیرانی
h.pirani@modares.ac.ir
3
دانشگاه تربیت مدرس
AUTHOR
1. Adesemoye A.O., Torbert H.A., and Kloepper J.W. 2009. Plant growth-promoting rhizobacteria allow reduced application rates of chemical fertilizers. Microbial ecology, 58(4), 921-929.
1
2. Alam, M. Z., Braun, G., Norrie, J., & Hodges, D. M. 2013. Effect of Ascophyllum extract application on plant growth, fruit yield and soil microbial communities of strawberry. Canadian Journal of Plant Science, 93(1), 23-36.
2
3. Andrea, C., Lingua, G., Bardi, L., Masoero, G., & Berta, G. 2007. Influence of arbuscular mycorrhizal fungi on growth and essential oil composition in Ocimum basilicum var. Genovese. Caryologia, 60(1-2), 106-110.
3
4. Arun, K. S. 2002. A handbook of Organic Farming. Pub. Agrobios, India.
4
5. Azaz, D., Pemircif, M.N., and Baser K.H. 2002. Antimicrobial activity of Satureja oils. Zeitschrift für Naturforschung, 57: 817–821.
5
6. Bezić, N., Šamanić, I., Dunkić, V., Besendorfer, V., & Puizina, J. 2009. Essential oil composition and internal transcribed spacer (ITS) sequence variability of four South-Croatian Satureja species (Lamiaceae). Molecules, 14(3), 925-938.
6
7. Blunden, G., & Wildgoose, P. B. (1977). The effects of aqueous seaweed extract and kinetin on potato yields. Journal of the Science of Food and Agriculture, 28(2), 121-125.
7
8. Chatterji, A., Dhargalkar, V. K., Sreekumar, P. K., Parameswaran, P. S., Rodrigues, R., & Kotnala, S. 2004. Anti-influenza activity in the Indian seaweeds-A preliminary investigation. In the proceeding of the 2004 National Seminar on New Frontiers in Marine Bioscience Research, pp: 11-16.
8
9. Chojnacka, K., Saeid, A., Witkowska, Z., & Tuhy, L. 2012. Biologically active compounds in seaweed extracts—the prospects for the application. In The open conference proceedings journal, 3, (1), 20-28.
9
10. Chouliaras, V., Tasioula, M., Chatzissavvidis, C., Therios, I., & Tsabolatidou, E. 2009. The effects of a seaweed extract in addition to nitrogen and boron fertilization on productivity, fruit maturation, leaf nutritional status and oil quality of the olive (Olea europaea L.) cultivar Koroneiki. Journal of the Science of Food and Agriculture, 89(6), 984-988.
10
11. Dobromilska, R., Mikiciuk, M., & Gubarewicz, K. 2008. Evaluation of cherry tomato yielding and fruit mineral composition after using of Bio-algeen S-90 preparation. Journal of Elementology, 13(4), 491-499.
11
12. Durairatnam, M. 1961. Contribution to the study of the marine algae of Ceylon. Bulletin of the Fisheries Research Station, Ceylon, 10, 1-181.
12
13. Elansary, H. O., Yessoufou, K., Shokralla, S., Mahmoud, E. A., & Skalicka-Woźniak, K. 2016. Enhancing mint and basil oil composition and antibacterial activity using seaweed extracts. Industrial Crops and Products, 92, 50-56.
13
14. Erulan, V., Soundarapandian, P., Thirumaran, G., & Ananthan, G. 2009. Studies on the effect of Sargassum polycystum extract on the growth and biochemical composition of Cajanus cajan (L.). American-Eurasian Journal of Agricultural and Environmental Science, 6(4), 392-399.
14
15. Featonby-Smith, B. C., & Van Staden, J. 1983. The effect of seaweed concentrate and fertilizer on the growth of Beta vulgaris. Zeitschrift für Pflanzenphysiologie, 112(2), 155-162.
15
16. Featonby-Smith, B. C., & Van Staden, J. 1984. The effect of seaweed concentrate and fertilizer on growth and the endogenous cytokinin content of Phaseolus vulgaris. South African Journal of Botany, 3(6), 375-379.
16
17. Gollan, J. R., & Wright, J. T. 2006. Limited grazing pressure by native herbivores on the invasive seaweed Caulerpa taxifolia in a temperate Australian estuary. Marine and Freshwater Research, 57(7), 685-694.
17
18. Güllüce, M., Sökmen, M., Daferera, D., Aǧar, G., Özkan, H., Kartal, N. & Şahin, F. 2003. In vitro antibacterial, antifungal, and antioxidant activities of the essential oil and methanol extracts of herbal parts and callus cultures of Satureja hortensis L. Journal of Agricultural and food chemistry, 51(14), 3958-3965.
18
19. Hadian, J., Tabatabaei, S. M. F., Naghavi, M. R., Jamzad, Z., & Ramak-Masoumi, T. 2008. Genetic diversity of Iranian accessions of Satureja hortensis L. based on horticultural traits and RAPD markers. Scientia Horticulturae, 115(2), 196-202.
19
20. Heydari, M., Daneshian Mogaddam, A.M., Nourafcan, H. 2017. Effect of Vermicompost and Liquid Seaweed Fertilizer on Morpho-physiological Properties of Marigold (Calendula officinalis L.). Journal of Crop Ecophysiology, 10 (4), 891-906. (in Persian with English abstract)
20
21. Heywood, V.H. 2002. The conservation of genetic and chemical diversity in medicinal and aromatic plants. PP. 13 22. In: Sener, B. (Ed.), Biodiversity: Biomolecular Aspects of Biodiversity and Innovative Utilization, Kluwer Academic/Plenum Publishers, New York Jannin, L., Arkoun, M., Etienne, P., Laîne, P., Goux, D. on 32: 31–52. Indian Botanical Society, 71 (1):19-21.
21
22. Jayasinghe, P. S., Pahalawattaarachchi, V., & Ranaweera, K. K. D. S. 2016. Effect of Seaweed Liquid Fertilizer on Plant Growth of Capsicum annum. Discovery, 52, 723–734.
22
23. Karagiannidis, N., Thomidis, T., Lazari, D., Panou-Filotheou, E., & Karagiannidou, C. 2011. Effect of three Greek arbuscular mycorrhizal fungi in improving the growth, nutrient concentration, and production of essential oils of oregano and mint plants. Scientia horticulturae, 129(2), 329-334.
23
24. Kumar, G., & Sahoo, D. 2011. Effect of seaweed liquid extract on growth and yield of Triticum aestivum var. Pusa Gold. Journal of Applied Phycology, 23(2), 251-255.
24
25. Malakouti, M. J. 2018. Optimal fertilizer use recommendations for yield increase and production of healthy crops: determinig quality, type and time of fertilizer application for achaving an obtainable self-sufficiently, sustinable food security and optimizing farmers income (4thedition, completely revised). Moballeghan publishing. Farmers house Tehran- Iran. (in Persian with English abstract)
25
26. Melero, S., Vanderlinden, K., Ruiz, J. C., & Madejon, E. 2008. Long-term effect on soil biochemical status of a Vertisol under conservation tillage system in semi-arid Mediterranean conditions. European Journal of Soil Biology, 44(4), 437-442.
26
27. Mihajilov-Krstev, T., Radnović, D., Kitić, D., Stojanović-Radić, Z., & Zlatković, B. 2010. Antimicrobial activity of Satureja hortensis L. essential oil against pathogenic microbial strains. Archives of Biological Sciences, 62(1), 159-166.
27
28. Nelson, W. R., & Van Staden, J. 1984. The effect of seaweed concentrate on growth of nutrient-stressed, greenhouse cucumbers. HortScience, l9(l), 8l-82.
28
29. Nelson, W.R. & van Staden, J. 1986. Effect of seaweed concentrates on the growth of wheat. South African Journal of Science, 82, 199-200.
29
30. Omidbaigi, R. 1997. Approaches to Production and Processing of Medicinal Plants. Vol two. Tarrahan e Nashr Publication. Tehran, Iran. (In Persian).
30
31. Özkalp, B., & Özcan, M. M. 2009. Antibacterial activity of several concentrations of sater (Satureja hortensis L.) essential oil on spoilage and pathogenic food-related microorganisms. World Applied Sciences Journal, 6(4), 509-14.
31
32. Papenfus, H. B., Kulkarni, M. G., Stirk, W. A., Finnie, J. F., & Van Staden, J. 2013. Effect of a commercial seaweed extract (Kelpak®) and polyamines on nutrient-deprived (N, P and K) okra seedlings. Scientia Horticulturae, 151, 142-146.
32
33. Paul, J. and Shridevi, S.D.K. 2014. Effect of seaweed liquid fertilizer of Gracilria dura (Red seaweed) on Pennisetum glaucum in Thoothukudi, Tamil nadu, India. Indo American Journal of Pharmaceutical Research, 4 (4): 2231-6876.
33
34. Pramanick, B., Brahmachari, K., & Ghosh, A. 2013. Effect of seaweed saps on growth and yield improvement of green gram. African Journal of Agricultural Research, 8(13), 1180-1186.
34
35. Saa, S., Rio, O. D., Castro, S., & Brown, P. H. 2015. Foliar application of microbial and plant based biostimulants increases growth and potassium uptake in almond (Prunus dulcis). Frontiers in Plant Science, 6, 1-9.
35
36. Sabir, A., Yazar, K., Sabir, F., Kara, Z., Yazici, M. A., & Goksu, N. 2014. Vine growth, yield, berry quality attributes and leaf nutrient content of grapevines as influenced by seaweed extract (Ascophyllum nodosum) and nanosize fertilizer pulverizations. Scientia Horticulturae, 175, 1-8.
36
37. Shahbazi, F., Nejad, M. S., Salimi, A., & Gilani, A. 2015. Effect of seaweed extracts on the growth and biochemical constituents of wheat. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 8(3), 283.
37
38. Sharma, A.K. 2002. Biofertilizers for Sustainable Agriculture. Agro-bios, India.
38
39. Sivasankari, S., Venkatesalu, V., Anantharaj, M., & Chandrasekaran, M. 2006. Effect of seaweed extracts on the growth and biochemical constituents of Vigna sinensis. Bioresource Technology, 97(14), 1745-1751.
39
40. Street, R. A. 2012. Heavy metals in medicinal plant products—An African perspective. South African Journal of Botany, 82, 67-74.
40
41. Tawaha, K., Alali, F. Q., Gharaibeh, M., Mohammad, M., & El-Elimat, T. 2007. Antioxidant activity and total phenolic content of selected Jordanian plant species. Food Chemistry, 104(4), 1372-1378.
41
42. Tawfeeq, A., Culham, A., Davis, F., & Reeves, M. 2016. Does fertilizer type and method of application cause significant differences in essential oil yield and composition in rosemary (Rosmarinus officinalis L.). Industrial Crops and Products, 88, 17-22.
42
43. Van Staden, J. 1976. Seasonal changes in the cytokinin content of Ginkgo biloba leaves. Physiologia Plantarum, 38(1), 1-5.
43
44. Vijayakumar, S., Durgadevi, S., Arulmozhi, P., Rajalakshmi, S., Gopalakrishnan, T., & Parameswari, N. 2018. Effect of seaweed liquid fertilizer on yield and quality of Capsicum annum L. Acta Ecologica Sinica, In press
44
45. Zodap, S.T., A. Gupta, S.C. Bhandari, U.S. Rawat, D.R. Chaudhary, K. Eswarana, and J. Chikara. 2011. Foliar application of seaweed sap as biostimulant for enhancement of yield and quality of tomato (Lycopersicum esculentum Mill). Journal of Scientific and Industrial Research, 70, 215-219.
45
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه اثر رویشگاه بر صفات مورفولوژیکی و فیتوشیمیایی گیاه پونه (Mentha longifolia L.)
پونه (Mentha longifolia L.) گیاه دارویی و معطر ارزشمند متعلق به خانواده نعناعیان است. در این تحقیق، اثر شش رویشگاه با ارتفاع متفاوت )ارتفاعات شهرستان آمل) بر روی برخی خصوصیات مورفولوژیکی و بیوشیمیایی گیاه پونه در قالب طرح کاملاً تصادفی در سه تکرار مورد بررسی قرار گرفت. نتایج بدست آمده نشان داد صفات مورد ارزیابی در بین رویشگاههای پونه تفاوت معنیداری را در سطح احتمال یک درصد نشان دادند. بر اساس نتایج مقایسه میانگین بیشترین تعداد برگ در بوته (25 عدد) و تعداد شاخه گیاه در بوته (27 عدد) پونه به ترتیب در منطقه گت لش و سیوزمین بدست آمد. همچنین بیشترین تعداد گل (15 عدد) و بیشترین تعداد گره (22 عدد) به ترتیب در بندریکا و گت لش مشاهده شد. منطقه گت لش و سیوزمین به ترتیب بیشترین و کمترین میزان محتوای رنگیزههای فتوسنتزی را دارا بودند. تفاوت معنیداری بین محتوای فنل کل و فلاونوئید کل در رویشگاههای مختلف وجود نداشت هرچند بیشترین میزان در مناطق پردمه و گت لش مشاهده شد. نتایج نشان داد بیشترین و کمترین بازده اسانس به ترتیب از رویشگاههای گت لش و واش ورین بدست آمد. میزان پولگون در برگ گیاه پونه با افزایش ارتفاع افزایش یافت بطوریکه بیشترین میزان پولگون (6069 پیپیام) در منطقه پردمه بدست آمد. بنابراین، با توجه به نتایج کلی بدست آمده، بهترین رویشگاهها برای حصول بیشترین بازدهی اسانس و پولگون به ترتیب رویشگاههای گت لش و پردمه میباشند.
https://jhs.um.ac.ir/article_37130_767606e6ebaabf65b11c7e2dcf67dfca.pdf
2020-02-20
698
710
10.22067/jhorts4.v33i4.79019
پونه
رویشگاه
ارتفاع
اسانس
پولگون
محسن
عیسی پور
mohsen_eisapoor@yahoo.com
1
موسسه آموزش عالی سنا ساری
LEAD_AUTHOR
خدایار
همتی
kh-hemmati@gau.ac.ir
2
دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
نسترن
همتی
nastaran_hemmati@yahoo.com
3
دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
1. Akbarzadeh M. 2004. Medicinal plants of labiate family in Vas location in Mazandaran. Iranian Journal of Medical and Aromatic Plants, 1(19):36-45.
1
2. Akhbari M., Aghajani Z., Karimi E., and Mazoochi A. 2016. Composition analysis of essential oil and biological activity of oily compounds of Mentha longifolia. New Cellular and Molecular Biotechnology Journal. 6(21):59-66.
2
3. Akowuah G.A., Ismail Z., Norhayati I., and Sadikun A. 2005. The effects of different extraction solvents of varying polarities on polyphenols of Orthosiphon stamineus and evaluation of the free radical-scavenging activity. Food Chemistry, 93(2):311-317
3
4. Anonymus. 2000. Quantification of Tannins in Tree Foliage. p. 4-5.
4
5. Asekun O.T., Grierson D.S., and Afolaya, A.J. 2007. Effect of drying methods on the quality and quantity of the essential oil of Mentha longifolia L. subsp. Capensis. Food Chemistry, 10:995-998.
5
6. Azarkish P. 2015. Evaluation of morphological and phytochemical diversity of some horsemint (Mentha Longifolia L.) ecotypes in South West of Iran. M.Sc. Thesis in Horticulture Ferdowsi Univesity of Mashhad. [In Persion]
6
7. Azarnivand H., Ghavam Arabani M., Sefidkon F., and Tavili A. 2010. The effect of ecological characteristics on quality and quantity of the essential oils of Achillea millefolium L. subsp. Millefolium. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants. 25(4):556-571 (in Persian with English abstract)
7
8. Bajalan I., Akbarzadeh M., Qalayi E., and Yarahmadi, E. 2013. Comparison of chemical compition of essential oil of Mentha longifolia L. from two regions of Iran. Canadian journal of pure and applied sciences. 7(3):2541-2543.
8
9. Barnes J.D., Balaguer L., Manrique E., Elvira S., and Davison A.W. 1992. A reappraisal of the use of DMSO for the extraction and determination of chlorophylls a and b in the lichens and higher plants. Environmental and Experimental Botany. 32(2):85-100.
9
10. Barzin G., Mazooji A., and Salimpour, F. 2014. Essential oil composition of four varieties of Mentha longifolia L. From northern parts of Iran. International Journal of Plant, Animal and Environmental Sciences, 4(2):639-643
10
11. Brown B. 2003. Mint soil fertility research in the PNW. Western Nutrient Management Conf. 5(3): 54-60.
11
12. Coleman W.M., Perfetti T.A., and Suberjr, R.L. 1998. Quantitive analysis of menthol isomer distributions in selected samples. Journal of Chromatographic Science, 36:318-321.
12
13. Gaeini Z., Sohrabvandi S., Sobhani R., and Soleimani M. 2013. Characteristics of pennyroyal essential oils. Iranian Journal of Nutrition Sciences and Food Technology, 7(5):661-668. [In Farsi]
13
14. Ghanbari M., Souri M.K., Omidbaigi R., and Mirzaei H.H. 2014. Evaluation of some ecological factors, morphological traits and essential oil productivity of Achillea millefolium L. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants. 30(5):692-701 (in Persian with English abstract)
14
15. Ghani A., Nemati S.H., Azizi M., Saharkhiz M.J. and Farsi M. 2014. The study of extract biochemical variations contents some of spearmint (Mentha spicata L.) Population. Journal of horticulture science. 4(27):433-443.
15
16. Ghasemi K., Ghasemi Y., Ehteshamnia A., Nabavi M., Nabavi F., Ebrahimzadeh A. and Pourmand F. 2011. Influence of environmental factors on antioxidant activity, phenol and flavonoid content of walnut. Medicinal Plant, 5(7):1128-1133.
16
17. Ghorbani A., Razavi S.M., Ghasemi Omran V.O., and Pirdashti H. 2018a. Piriformospora indica alleviates salinity by boosting redox poise and antioxidative potential of tomato. Russian Journal of Plant Physiology, 65(6):898–907
17
18. Ghorbani A., Razavi S.M., Ghasemi Omran V.O., and Pirdashti H. 2018b. Piriformospora indica inoculation alleviates the adverse effect of NaCl stress on growth, gas exchange and chlorophyll fluorescence in tomato (Solanum lycopersicum L.). Plant Biology, 20(4):729-736.
18
19. Habibi H., Mazaheri D., Majnoon Hoseini N., and Chaeechi M.R. 2007. Effect of altitude on essential oil and components in wild thyme (Thymus kotschyanus Boiss.) Taleghan region. Pajouhesh-va-Sazandegi, 73:2-10.
19
20. Huang D.J., Chun-Der L., Hsien-Jung C., and Yaw-Huei L. 2004. Antioxidant and antiproliferative activities of sweet potato (Ipomoea batatas [L.] LamTainong 57') constituents. Botanical Bulletin of Academia Sinica, 45:179-186.
20
21. Jaakola L., Maatta-Riihinen K.R., Karenlampi S., and Hohtola A. 2004. Activation of flavonoid biosynthesis by solar radiation in bilberry (Vaccinium myrtillus L.) leaves. Planta, 218(5):721-728.
21
22. Mirzaaie-nadoushan H., Rezaie M., and Jaimand K. 2001. Path analysis of the essential oil-related characters in Mentha spp. Flavour and Fragrance Journal, 16: 340-343.
22
23. Moghadam M., Omidbeygi R., Salimi A., Naghavi M.R. 2007. An assessment of genetic diversity among iranian populations of Basil (Ocimum spp.) using morphological traits. Iranian Journal of Horticultural Science. 44(3): 227-243 (in Persian with English abstract)
23
24. Mozaffarian V. 2013. A dictionary of Iranian plant names. Farhang Moaser Publishers Press. Tehran, Iran, pp: 228-230. [In Persian with English abstract]
24
25. Naghibi F., Mosaddegh M., Mohammadi Motamed M., and Ghorbani A. 2005. Labiatae family in folk medicine in Iran from ethnobotany to pharmacology. Iranian Journal of Pharmaceutical Research, 2:63-79.
25
26. Omidbeaigi R. 2013. Production and processing of medicinal plants. Vol. I. Behnashr Press. Mashhad, Iran. 347 P. [In persian with English abstract]
26
27. Omidbeygi R. 2006. Production and processing of medicinal plants, Volume I. Publisher: Astan Quds Razavi (Mashhad), 397p.
27
28. Rai-Dehagi H., Razmjoo J., Sabzaliyan M.R., and Arzani A. 2014. Effect of shading on morphological characteristics and essential oil content in different of genotypes of three species of mint. Journal of Plant Process and Function, 4(13): 58-69.
28
29. Rezaei M.B., Jaymand K., and Jamzad Z. 2000. Chemical constituents of Mentha longifolia (L.) Hudson var. chlorodictya Rech. f. from three different localities. Pajouhesh-va-Sazandegi. 13:60-63 (in Persian with English abstract)
29
30. Saeidi K., Sefidkon F., and Babaei A. 2014. Determination of carotenoids and lycopene content of dog-rose (Rosa canina L.) fruit in different regions of Iran. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 30(5):839-842.
30
31. Tajali A., and Khazaeipoor M. 2002. Effect of height and organs on flavonoids of Crataegus microphylla. International Journal of Biosciences. 7:54-58.
31
32. Tajali A.A., Amin G.R., and Gandomkar, G.A. 2009. Study and identification compounds of essential oil of Camphorosma monspeliaca in different phonological stages in Arak, Hamedan and Shahr-e-Kord rangelands. Rangeland. 3(2): 302-316 (in Persian with English abstract)
32
33. Tandon H.L.S. (Ed.). 1995. Methods of analysis of soils, plants, waters and fertilisers. New Delhi, India: Fertilisers Development and Consultation Organization.
33
34. Teixeira B., Marques A., Ramos C., Batista I., Serrano C., Matos O., Neng N.R., Nogueira J.M.F., Saraiva J.A., and Nunes M.L. 2012. European pennyroyal (Mentha pulegium) from Portugal: Chemical composition of essential oil and antioxidant and antimicrobial properties of extracts and essential oil. Industrial Crops and Products, 36: 81-87.
34
35. Yavari A.R., Nazeri V., Sefidkon F., and Hassani M.E. 2010. Evaluation of some ecological factors, morphological traits and essential oil productivity of Thymus migricus Klokov & Desj.-Shost. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 26(2):227-238 (in Persian with English abstract)
35
36. Yazdani D., Jamshidi A.H., and Mojab F. 2002. Comparison on menthol content of cultivated peppermint at different regions of Iran. Journal of Medicinal Plants. 3:73-78 (in Persian with English abstract)
36
37. Zeinali H., Arzani A., and Razmjo K. 2004. Morphological and essential oil content diversity of Iranian minhs (mentha spp). Iranian Journal of Science & Technology, Transaction A, 28 No. A1.
37
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر کاربرد اسیدفولویک و نانوکلات آهن بر گلدهی و عمر پس از برداشت گل ژربرا (Gerbera jamesonii) رقم دانی
به منظور بررسی تأثیر غلظتهای مختلف اسیدفولویک و نانوکلات آهن بر گلدهی و همچنین عمر پس از برداشت گل ژربرا رقم دانی، آزمایشی به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار در سال 97-96 انجام شد. فاکتورهای آزمایش شامل اسیدفولویک در 4 سطح صفر، 50، 100 و 250 میلیگرم در لیتر بهصورت کاربرد خاکی و نانوکلات آهن در 4 سطح صفر ، 1، 2 و 4 گرم در لیتر بهصورت محلولپاشی بود. آزمایش در شرایط گلخانه در گلدان و در محیط کشت هیدروپونیک اجرا شد. در این پژوهش شاخصهای تعداد روز تا ظهور غنچه گل، طول ساقه گلدهنده، ماندگاری گل روی بوته، عمر گلجای، وزن تر و خشک گل و همچنین محتوای کلروفیل و کاروتنوئید مورد بررسی قرار گرفت. نتایج حاصل نشان داد که با افزایش غلظت نانوکلات آهن بیشترین وزن خشک گل بدست آمد ولی وزن تر گل تحت تأثیر تیمارها قرار نگرفت. تیمار اسید فولویک 50 میلیگرم در لیتر بدون کاربرد نانوکلات آهن سبب زود گلدهی شد. محتوای کلروفیل (کلروفیل a، b و کلروفیل کل) و مقدار کاروتنوئید ژربرا با افزایش غلظتهای اسیدفولویک و نانوکلات آهن در مقایسه با شاهد افزایش یافت. بیشترین ماندگاری گل روی بوته در غلظت 250 میلیگرم در لیتر اسیدفولویک به همراه 1 گرم در لیتر نانوکلات آهن به دست آمد و در غلظت 4 گرم در لیتر نانوکلات آهن تمامی غلظتهای اسیدفولویک باعث افزایش معنیدار عمرگلجای نسبت به تیمار شاهد شدند. بطور کلی نتایج حاصل، بیانگر تأثیر مثبت این تیمارها بر بیشتر صفات اندازهگیری شده میباشد.
https://jhs.um.ac.ir/article_37137_48e25cf6cc43d984ba393614e2c21fe7.pdf
2020-02-20
711
725
10.22067/jhorts4.v33i4.80118
کاروتنوئید
کلروفیل
ماندگاری گل
وزن خشک گل
سهیلا
حاجی زاده
st-s.hajizadeh@urmia.ac.ir
1
دانشگاه ارومیه
AUTHOR
زهره
جبارزاده
z.jabbarzadeh@urmia.ac.ir
2
دانشگاه ارومیه
LEAD_AUTHOR
میرحسن
رسولی صدقیانی
sadaghianii@yahoo.com
3
دانشگاه ارومیه
AUTHOR
1. Ahmadi M., Ehsanzadeh P., and Jabbari F. 2007. Introduction to Plant Physiology (translated), Volume 2, Tehran University Press. 681 p. (In Persian).
1
2. Akbarian M.M., Heidari Sharifabad H., Noormohammadi G., and Darvish Kojouri F. 2012. The effect of potassium, zinc and iron foliar application on the production of saffron (Crocus sativa). Annals of Biological Research, 3(12): 5651-5958.
2
3. Askary M., Amirjani M.R., and Saberi T. 2016. Comparison of the effects of nano-iron fertilizer with iron-chelate on growth parameters and some biochemical properties of Catharanthus roseus. Journal of Plant Nutrition, 7(40): 974-982.
3
4. Atiyeh R.M., Lee S., and Edwards C.A. 2002. The influence of humic acids derived from earthworm-processed organic wastes on plant growth. Bioresource Technology, 84: 7-14.
4
5. Bagi H., and Chamani E. 2016. Effects of iron nanoparticles and humic acid on growth, development and vase life of cut rose flower cv. White Nablus under hydroponic conditions. Journal of Science and Technology of Greenhouse Culture, 7(3): 103-112. (In Persian with English abstract).
5
6. Balazadeh S., and Hassanpour Asil M. 2014. The Effect of Humic Acid and nano calcium chelate on growth Chrysanthemum morfolium. International conference on sustainable development, strategies and challenges with a focus on Agriculture, Natural Resources, Environment and Tourism. Tabriz. (In Persian).
6
7. Bekhrad H., Niknam F., and Mahdavi B. 2017. Effects of nano fertilizer and different levels of nitrogen on grain and oil yield of sesame (Sesamum indicum L.). Journal of Plant Ecophysiology, 9(28): 110-122. (In Persian).
7
8. Briat J.F., Curie C., and Gaymard F. 2007. Iron ultilization and metabolism in plants. Current Opinion in Plant Biology, 10(3): 82-276.
8
9. Davoodi Fard M., Habibi D., and Davoodi Fard F. 2012. Effects of salt stress on cell membrane stability, chlorophyll and yield components in wheat inoculated with plant growth promoting bacteria and humic acid. Iranian journal of Agronomy and Plant Breeding, 8(2): 71-86. )In Persian with English abstract(.
9
10. Dolatian N. 2013. The effect of humic acid on quantitative and qualitative characteristics of strawberry var. Selva under greenhouse conditions. MSc Thesis, Ferdowsi University of Mashhad.
10
11. Dole J.M., and Wilkins H.F. 2004. Floriculture, principles and species. Prentice Hall Upper Saddle River New Jersey. Pp. 356-360.
11
12. Dudley J.B., Pertuit Jr, A.J., and Toler J.E. 2004. Leonardite influences zinnia and marigold growth. HortScience, 39: 251–255.
12
13. Eid R.A., and Abou-Leila B.H. 2006. Response of croton plants to gibbeellic acid, benzyladenine and ascorbic acid application. Word Journal of Agricultural Sciences, 2(2): 174-179.
13
14. Gill S.S., and Tuteja N. 2010. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. Plant Physiology and Biochemistry, 48: 909-930.
14
15. Hadavi E., Salehi M., and Moradi P. 2011. Application of microorganisms compared with nanoparticles of silver, humic acid and gibberellic acid on vase life of cut gerbera goodtimming. Journal of Ornamental and Horticultural Plants, 1(1): 27-33.
15
16. Haghighi M., Nikbakht A., Xia Y.P., and Pessarakli M. 2014. Influence of humic acid in diluted nutrient solution on growth, nutrient efficiency and postharvest attributes of gerbera. Communications in Soil Science and Plant Analysis, 45: 177-188.
16
17. Karbalaye Golizadeh Sh., Mir Mahmudi T., and Khalili Aghdam N. 2016. Morpho-physiological changes hempseed (Cannabis satival L.) traits as affected by seed priming whith fulvic acid and hydrogen peroxide. Journal of Crop Ecophysiology (Agricultural Science), 10(1): 73-88. (In Persian with English abstract).
17
18. Kheiry A. Vaisi M., and Sanikhani M. 2017. Effect of micro-elements of Fe, Zn and Mn on some characteristics of Borage (Borago officinalis L.). Journal of Plant Ecophysiology, 9 (29): 183-194. (In Persian with English abstract).
18
19. Kholde Barin B., and Eslamzadeh T, 2005. The nutrition mineral of high plants. Shiraz University Press. First volume, 456 p. (In Persian).
19
20. Khosh Khoui M., Sheibani B., Rouhani I. and Tafazzoli E.A. 2008. Principles of gardening. Shiraz University Press, 19nd 596 p. (In Persian).
20
21. Lichtenthaler H.K., and Wellburn A.R.1987. Determination of total carotenoids and chlorophylls a and b of leaf in different solvents. Biochemical Society Transactions, 11: 591- 592.
21
22. Lu P., He Sh., Li H., Cao J., and Xu H.L. 2010. Effects of nano-silver treatment on vase life of cut rose cv. Movie Star flowers. Journal of Food, Agriculture and Enviroment, 8(2): 1118-1122.
22
23. Maleki Farahani S., Khalesi A., and Sharghi Y. 2015. Effect of nano iron chelate fertilizer on iron absorption and saffron (Crocus sativus L.) quantitative and qualitative characteristics. Asian Journal of Biological Sciencec, 8(2): 72-82.
23
24. Marschner H. 2012. Mineral nutrition of higher plants. 3rd Ed. New York, USA. 672p.
24
25. Moghadam A.R., Vattani H., Baghaei B., and Keshavarz N. 2012. Effect of different levels of fertilizer nano-iron chelates on growth and yield characteristics of two varieties of spinach (Spinacia oleracea L.). Research Journal of Applied Sciences, 4(12): 4813-4818.
25
26. Mohamadipoor R., Sedaghathoor S., and Mahboub-Khomami A. 2013. Effect of application of iron fertilizer in two methods foliar and soil application on growth characteristics of Spathyphyllum illusion. European Journal of Experimental Biology, 3(1): 232-240.
26
27. Morard P., Eyheraguibel B., Morard M., and Silvestre J. 2011. Direct effects of humic- like substances on growth, water and mineral nutrition of various species. Journal of Plant Nutrition, 34: 46-59.
27
28. Mothaghi D. 2015. Fulvic acid and its role in agriculture. Datis Agrochemicals R&D Department.
28
29. Nadi E., Aynehband A., and Mogaddam M. 2013. Effect of nano-iron chelate fertilizer on grain yield, protein percent and cholorophyll content of Faba bean (Vicia faba L.). International Journal of Biosciences, 3(9): 272-276.
29
30. Nardi S., Pizzeghello D., Gessa C., Ferrarese L., Trainotti L., and Casadoro G. 2000. A low molecular weight humic fraction on nitrate uptake and protein synthesis in maize seedlings. Soil Biology and Biochemistry, 32: 415-419.
30
31. Nasiri Y., Zehtab Salmasi S., Nasrullah Zadeh S., Ghassemi Gholezani K., Najafi N., and Javanmard A. 2013. Evaluation of foliar spray of ferrous sulfate and zinc sulfate on yield and nutrients concentration of aerial parts in German chamomile. Journal of Agricultural Science, 23(3), 105-115. (In Persian with English abstract)
31
32. Nazari Deljou M., Pour Youssef M., Karamian R., and Jaberian Hamedani H. 2012. Effect of cultivar on water relations and postharvest quality of gerbera (Gerbera jamesonii Bolus ex. Hook f.) cut flower. World Applied Sciences Journal, 18(5): 698-703.
32
33. Rezaei R. Hosseini S.M. Shabanali Fami H., and Sarafrazi A.M. 2009. An identification and analysis the mechanisms of nanotechnology development in Iranian agricultural sector. Iranian Journal of Agricultural Economics and Development, 42(3): 379-388. (In Persian with English abstract)
33
34. Salman S.R., Abou-Hussein S.D., Abdel-Mawgoud A.M.R., and El-Nemr M.A. 2005. Fruit yield and quality of watermelon as affected by hybrids and humic acid application. Journal of Applied Sciences Research, 1: 51-58.
34
35. Shahsavan Markadeh M., and Chamani E. 2014. Effects of various concentrations and time of humic acid application on quantitative and qualitative characteristics of cut stock flower Matthiola incana ‘Hanza’. Journal of Science and Technology of Greenhouse Culture, 5(19): 157-170. (In Persian with English abstract)
35
36. Shamloo A., and Roozbahani A. 2016. Effect of amino acids and microelements on the rate of photosynthetic pigments content and yield of red bean (Phaseolus vulgaris L.). Journal of Plant Physiology, 7(21): 136 - 150.
36
37. Suh H.J., Yoo K.S., and Suh S.G. 2014. Effect of foliar application of fulvic acid on plant growth and fruit quality of tomato (Lycopersicon esculentum L.). Horticulture Environment and Biotechnology, 55(6): 455-461.
37
38. Yang C.M., Ming C.W., Lu Y.F., Chang I.F., and Chou C.H. 2004. Humic substances affect the activity of chlorophylls. Journal of Chemical Ecology, 30(50): 1057-1065.
38
39. Yazdani B. 2010. Effect of different concentrations of humic acid and fulvic acid on the qualitative and quantitative characteristics of Gerbera jamesonii. Master's Thesis. Isfahan University of Agricultural Sciences. (In Persian).
39
ORIGINAL_ARTICLE
شبیهسازی پاسخ جوانهزنی هندوانه (Citrullus lanatus Thunb.) به دما و پتانسیل آب
جوانهزدن کامل و یکنواخت که شرط لازم برای استقرار گیاهچههای قوی و نهایتاً تولید موفق یک محصول است، تحت تاثیر عوامل مختلف محیطی بویژه حرارت و رطوبت بستر کشت قرار میگیرد. به منظور مطالعه تأثیر دما و تنش خشکی بر جوانهزنی بذر هندوانه و کمی سازی پاسخ جوانهزنی با مدلهای زمان حرارتی-رطوبتی، آزمایشی به صورت فاکتوریل با هفت سطح دما شامل 10، 15، 20، 25، 30، 35 و 40 درجۀ سلسیوس و شش سطح تنش خشکی شامل 0، 25/0-، 5/0-، 75/0-، 0/1- و 25/1- مگاپاسکال انجام شد. نتایج نشان داد بطور متوسط در همۀ سطوح دمایی با کاهش پتانسیل اسمزی، میزان جوانهزنی کاهش یافت، با اینوجود شدت این کاهش در محدوده حرارتی 25 درجه سانتیگراد کمتر از دماهای بالاتر و پایین تر آن بود. کمینه و بیشینه دما برای جوانهزنی هندوانه در روش رگرسیون خطی به ترتیب 7/10 و 0/40 درجه ساتیگراد، و در روش مدل زمان حرارتی 5/11 و 1/40 درجه سانتیگراد برآورد گردید. درجه حرارت مطلوب جوانهزنی نیز در روش رگرسیون و مدل زمان حرارتی-رطوبتی به ترتیب 3/25 و 2/25 درجه سانتیگراد برآورد شد. مقدار پتانسیل آب پایه برای جوانهزنی هندوانه در مدل زمان رطوبتی در درجه حرارتهای مختلف نیز بین 45/0- تا 23/1- مگاپاسکال محاسبه شد، با اینوجود در مدل زمان حرارتی-رطوبتی مقدار پتانسیل آب آستانه برای جوانهزنی در دامنه حرارتی پایین تر و بالاتر از حد مطلوب حرارتی بین 1/1- تا 2/1- مگاپاسکال تخمین زده شد. بدین ترتیب نتایج نشان داد که با افزایش حرارت بستر کشت پتانسیل آب پایه برای جوانهزنی افزایش خواهد یافت. در نهایت نتایج مدل نشان داد که مدل زمان حرارتی-رطوبتی بهخوبی قادر است بیش از 90 درصد تغییرات جوانهزنی بذر هندوانه را در پاسخ به حرارت و رطوبت کمی کند.
https://jhs.um.ac.ir/article_37145_a4e10a5008c555f1dc160f3108b8ecfc.pdf
2020-02-20
727
741
10.22067/jhorts4.v33i4.80628
تجزیه پروبیت
تنش خشکی
پتانسیل آب پایه
مدل زمان حرارتی-رطوبتی
سید فرهاد
صابرعلی
sfsaberali@gmail.com
1
مجتمع آموزش عالی تربت جام
LEAD_AUTHOR
حسین
نستری نصرآبادی
ho_nastari@yahoo.com
2
مجتمع آموزش عالی تربت جام
AUTHOR
زهرا
شیرمحمدی علی اکبر
masoumeh.shirmohamadi@gmail.com
3
مجتمع آموزش عالی تربت جام،
AUTHOR
1- Akram-Ghaderi F., Soltani A. and Sadeghipour H.R. 2008. Effect of temperature and water potential on germination of medicinal pumpkin (Cucurbita pepo. convar. pepo var. styriaca), black cumin (Nigella sativa L.) and borago (Borago officinalis L.). Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources, 15(5): 157-170. (In Persian)
1
2- Allen P.S., Meyer S.E. and Khan M.A. 2000. Hydrothermal time as a tool in comparative germination studies.p.401–410. In: Black, M., Bradford, K. J., Vazquez-Ramos J. (ed.), Seed biology: Advances and applications, CAB International, Wallingford, UK.
2
3- Alvarado V., and Bradford K.J. 2002. A hydrothermal time model explains the cardinal temperatures for seed germination. Plant, Cell and Environment, 25: 1061–1069.
3
4- Argyris J., Dahal P., Hayashi E., Still D.W., and Bradford K.J. 2008. Genetic variation for lettuce seed thermoinhibition is associated with temperature-sensitive expression of abscisic acid, gibberellin, and ethylene biosynthesis, metabolism, and response genes. Plant Physiology 148: 926–947.
4
5- Bakhshandeh E., Atashi S., Hafeznia M., Pirdashti H., and Teixeira da Silva J. A. 2015. Hydrothermal time analysis of watermelon (Citrullus vulgaris cv. ‘Crimson sweet’) seed germination. Acta Physiologiae Plantarum, 37: 1737-1743.
5
6- Baskin C.C., and Baskin J. M. 2014. Seeds: Ecology, biogeography and evolution of dormancy and germination (2nd ed). Elsevier/Academic Press, San Diego, California, USA.
6
7- Bloomberg M., Sedcole J.R., Mason E.G., and Buchan G. 2009. Hydrothermal time germination models for radiata pine (Pinus radiata D.Don). Seed Science Research, 19: 171–182.
7
8- Bochet E., Garcia-fayos P., Alborch B., and Tormo J. 2007. Soil water availability effects on seed germination account for species segregation in semiarid roadslopes. Plant and Soil, 295: 179 – 191.
8
9- Boddy L.G., Bradford K.J., and Fischer A.J. 2012. Population-based threshold models describe weed germination and emergence patterns across varying temperature, moisture and oxygen conditions. Journal of Applied Ecology, 49: 1225–1236.
9
10- Boroumand-Rezazadeh Z., and Koocheki A. 2006. Evaluation of cardinal temperature for three species of medicinal plants, Ajowan (Trachyspermum ammi), Fennel (Foeniculum vulgare) and Dill (Anethum graveolens). BIABAN (Desert Journal), 11, 11-16. (In Persian)
10
11- Bradford K.J. 1995. Water relations in seed germination. P.351–396. In: Kigel, J., Galili, G. (ed.), Seed Development and Germination. Marcel Dekker, New York,
11
12- Bradford K.J. 2002. Application of hydrothermal time to quantifying and modeling seed germination and dormancy. Weed Science, 50: 248–260.
12
13- Cave R.L., Birch C.J., Hammer G.L., Erwin J.E., and Johnston, M.E. 2011. Cardinal temperatures and thermal time for seed germination of brunonia australis (Goodeniaceae) and calandrinia sp. (Portulacaceae). HortScience, 46: 753–758.
13
14- Cheng Z., and Bradford, K.J. 1999. Hydrothermal time analysis of tomato seed germination responses to priming treatments. Journal of Experimental Botany, 50: 89–99.
14
15- Chantre G.R., Batlla D., Sabbatini M.R., and Orioli, G. 2009. Germination parameterization and development of an after-ripening thermal-time model for primary dormancy release of Lithospermum arvense seeds. Annals of Botany, 103: 1291–1301.
15
16- Dahal P. and Bradford K.J. 1994. Hydrothermal time analysis of tomato seed germination at suboptimal temperature and reduced water potential. Seed Science Research 4: 71–80.
16
17- Demir I., and Mavi K. 2004. The effect of priming on seedling emergence of differentially matured watermelon (Citrullus lanatus Thunb.) seeds. Scientia Horticulturae, 102: 467-473.
17
18- Ellis R.H, Covell S., Roberts E.H. and Summerfield R.J. 1986. The influence of temperature on seed germination rate in grain legumes. II. Intraspecific variation in chickpea at constant temperatures. Journal of Experimental Botany, 37: 1503–1515.
18
19- Ertan, S.K. 2010. Modelling the effect of temperature on seed germination in some cucurbits. African Journal of Biotechnology, 9: 1343–1353.
19
20- Fenner M., and Thompson K. 2005. The ecology of seeds. Cambridge University Press, Edinburgh House, Cambridge. 250 p.
20
21- Fernandez G., and Johnston M. 1995. Seed vigor testing in lentil, bean, and chickpea. Seed Science and Technology, 23: 617-627.
21
22- Finney D.J. 1971. Probit analysis. Third edition. Cambridge University Press, Cambridge.
22
23- Gareca E.E., Vandelook F., Fernandez M., Hermy M., Honnay O., Hermy M., and Honnay, O. 2012. Seed germination, hydrothermal time models and the effects of global warming on a threatened high Andean tree species. Seed Science Research, 22: 287–298.
23
24- Grundy A.C., Phelps K., Reader R.J., and Burston S. 2000. Modelling the germination of Stellaria media using the concept of hydrothermal time. New Phytologist, 148: 433–444.
24
25- Gummerson R.J. 1986. The effect of constant temperatures and osmotic potential on the germination of sugerbeet. Journal of Experimental Botany, 37:729–741.
25
26- Hasandokht M.R. 2012. Vegetables Production Technology. Selsele Press. Tehran. Iran. (in Persian)
26
27- Holt, J.S. and D.R. Orcutt. 1996. Temperature thresholds for bud sprouting in perennial weeds and seed germination in cotton. Weed Science. 44:523–533.
27
28- Kebreab E., and Murdoch A.J. 1999. Modelling the effects of water stress and temperature on germination rate of Orobanche aegyptiaca seeds. Journal of Experimental Botany,50 ): 655–664.
28
29- Kebreab E., and Murdoch A.J.2000. The effect of water stress on the temperature germination rate of Orobanche aegyptiaca seeds. Journal of Experimental Botany, 50): 655-664.
29
30- Kurtar E.S. 2010. Modelling the effect of temperature on seed germination in some cucurbits. African Journal of Biotechnology, 9: 1343–1353.
30
31- Larsen S.U., Bailly C., Côme D., and Corbineau F. 2004. Use of the hydrothermal time model to analyse interacting effects of water and temperature on germination of three grass species. Seed Science Research, 14: 35-50.
31
32- Michel B.E. and Kaufmann M.R. 1973. The osmotic potential of polyethylene glycol 6000. Plant Physiology, 51: 914–916.
32
33- National Agriculture Statistics. 2017. Ministry of Jahad-Agriculture. Information and Communication Technology Center. Pp 116.
33
34- Ni B.R., and Bradford K.J. 1992. Quantitative models characterizing seed germination responses to abscisic acid and osmoticum. Plant Physiology, 98: 1057–1068.
34
35- Nozari-nejad M., Zeinali E., Soltani A., Soltani E., and Kamkar, B. 2013. Quantify wheat germination rate response to temperature and water potential. Journal of Crop production, 6 : 117-135. (in Persian with English abstract)
35
36- Rowse H.R., and Finch-Savage, W.E. 2003. Hydrothermal threshold models can describe the germination response of carrot (Daucus carota) and onion (Allium cepa) seed populations across both sub- and supra-optimal temperatures. New Phytologist, 158: 101–108.
36
37- Singh S., Singh P., Sanders D.C., and Wehner, T. C. 2001. Germination of watermelon seeds at low temperature. Report-Cucurbit Genetics Cooperative, 24: 59–64.
37
38- Steinmaus S.J., Timonthy S.P. and Jodie S.H. 2000. Estimation of base temperature for nine weed species. Journal of Experimental Botany, 51: 275– 286.
38
39- Wang R., Bai Y., and Tanino, K. 2005. Germination of winterfat (Eurotia lanata Moq.) seeds at reduced water potentials: testing assumptions of hydrothermal time model. Environmental and Experimental Botany, 53: 49–63.
39
40- Wen-Hu X., Fan Y., Baskin C. C., Baskin J.M., and Wang Y.R. 2015. Comparison of the effects of temperature and water potential on seed germination of Fabaceae species from desert and Subalpine grassland. American Journal of Botany 102 : 649 – 660.
40
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر برخی مالچهای آلی بر افزایش مقاومت به سرما درگیاه تاج الملوک (Aquilegia sp.)
برای بررسی اثر تنش یخ زدگی و ارزیابی تحمل به آن با استفاده از انواع مالچهای آلی در گیاه تاج الملوک تحت شرایط کنترل شده، این آزمایش به صورت فاکتوریل بر پایه طرح کاملاً تصادفی با چهار تکرار در دانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد اجرا گردید. تیمارهای آزمایشی شامل 4 نوع مالچ در ترکیب با خاک ( شاهد (بدون استفاده از مالچ)، 50 درصد خاک+50 درصد کود دامی، 50 درصد خاک+ 50 درصد سوزنی برگ، 50 درصد خاک + 50 درصد سبوس برنج) و 5 سطح دمای یخ زدگی (0، 5-، 10-، 15-، 20- درجه سانتیگراد) بود. جهت ارزیابی تحمل به دماهای یخ زدگی درصد نشت الکترولیتها، تعداد برگ، سطح سبز برگ، وزن خشک بوته و محتوای پرولین برگی اندازه گیری شد. نتایج نشان داد با کاهش دما از 0 به 20- درجه سانتیگراد قطر ساقه، سطح برگ و تعداد برگ در تیمار مالچ سبوس به ترتیب 6/42، 4/73، 2/21 درصد، در مالچ سوزنی برگ 2/35، 9/64، 6/47 درصد ، در مالچ کودی 1/ 20، 4/46، 8/7 درصد و در شاهد مالچ 8/32، 79، 7/30 درصد کاهش یافت در دمای 5- درجه سانتیگراد مقدار پرولین در برگ 26 درصد و در دمای 20- 50 درصد نسبت به شاهد افزایش داشت. همچنین کمترین مقدار پرولین (73/0 میکرومول بر گرم وزن تر) در گیاهان تحت تیمار با مالچ سبوس بود. به طور کلی، تنش یخبندان باعث کاهش صفات مورفولوژیک اندازه گیری شده در تاج الملوک شد ولی استفاده از مالچهای آلی منجر به بهبود این صفات گردید به طوریکه بهترین نتایج در مالچ کود دامی بدست آمد.
https://jhs.um.ac.ir/article_37156_e4be8f784699c73825298ce4b7c09fcd.pdf
2020-02-20
757
767
10.22067/jhorts4.v33i4.81552
پرولین
کربوهیدرات
کلروفیل کل
نشت الکترولیت
وزن خشک
تاج الملوک
یحیی
سلاح ورزی
selahvarzi@um.ac.ir
1
دانشگاه فردوسی مشهد
LEAD_AUTHOR
مریم
کمالی
m.kamali57@yahoo.com
2
دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
جعفر
نباتی
jafarnabati@ferdowsi.um.ac.ir
3
دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
حمید
احمدپور میر
hamidahmadpr@gmail.com
4
دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
1. Adeniyi O. T., Akparobi S. O., and Ekanayake, J. 2004. Field studies on chlorophyll a fluorescence for low temperature tolerance testing of cassava (Manihot esculenta Crantz). Food, Agriculture and Environment, 2(1): 166-170.
1
2. Azizi, H., Nezami, A., Nasiri Mahalati, M., Khazaee, H.R., 2007. Evaluation of freezing tolerance of wheat cultivars under controlled conditions. Journal of Iranian Field Crops Research, 6(1), 109-119. [In Persian with English Summary].
2
3. Badaruddin M., Reynolds M. P., and Ageeb O. A. A. 1999. Wheat management in warm environments: Effect of organic and inorganic fertilizers, irrigation frequency and mulching. Agronomy Journal, 91, 975-983.
3
4. Bagheri A., Nezami A., and Soltani, M. 2000. Breeding cold-blooded beans to tolerate stress (translation). Agricultural Research, Training and Promotion Organization. P 446.
4
5. Bates. L. S., Waldran. R. P. and Teare, I. D. 1973. Rapid determination of free proline for water studies. Plant Soil, 39:205-208.
5
6. Bizhani Sh., Salehi H., Jokar A., and Daneshmand B. 2013. Cold tolerance and antioxidant response of Chaman Poa and Papalom. Journal of Production and Processing of Agricultural and Horticultural Products, 5(17): 229-237.
6
7. Bonachela S; (Granados, M.R, Lopez, J.C, Hernandez, J, Magan, J.J, Baeza, E.J and Baille, A). 2012. How plastic mulches affect the thermal and radiative microclimate in an unheated low-cost greenhouse. Agricultural and Forest Meteorology, 152, 65-72.
7
8. Bowker, M. (Edinger, Philip).1989. "Lawn and Grand Covers".Sunset publishing.
8
9. Cardona C.A., Duncan R.R., and Lindstorm O. 1997. Low temperature tolerance assessment in Paspalum. Crop Science, 37:1283-1291.
9
10. Cardona C.A., Duncan R.R., and Lindstrom O. 1997. Low temperature tolerance assessment in Paspalum. Crop Science. 37: 1283-1291.
10
11. Dashti M., Kafi M., Tavakoli H., Mirza M., and Nezami A. 2013. Effects of freezing stress on Morpho-physiological indices and chlorophyll fluorescence of Salvia leriifolia Benth. Seedlings.Journal of Plant Researches. 28(5): 962-973.
11
12. Dere S., Gunes T., and Sivaci R. 1998. Spectrophotometric determination of chlorophyll a, b and total carotenoid contents of some algae species using different solvents. American Journal of Botany, 22: 13-17.
12
13. Dubois D., Gilleres K.A., and Hamilton J.K. 1956. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Analytical Chemistry, 350-356.
13
14. Dunn J. H., Bughrara S. S., Warmund M. R., and Fresenburg B. F. 1999. Low temperature tolerance of zoysia grasses. Horticulture Science 34: 96-99.
14
15. Duryea Marry L; (English, R. Jeffery and Hermansen, L. Annie). 1999. "A Comparison of Landscape Mulches: Chemical, Allelopathic, And Decomposition Properties". Journal of Arboriculture, 2, 88-97.
15
16. Eugenia M., Nunes S., and Ray Smith G. 2003. Electrolyte leakage assay capable of quantifying freezing resistance in rose clover. Crop Science 43: 1349-1357.
16
17. Farahmand H., Sarcheshme pour M., Safari R., and Nazari F., 2011. Reduction of evaporation using mulch in green space. Eleventh General Irrigation Seminar and Evaporation Reduction.
17
18. Fry J. D., Lang N. S. and Clifton R. G. P. 1991. Freezing resistance and carbohydrate composition of 'Floratam' St. Augustinegrass. Horticulture Science, 26: 1537-1539.
18
19. Ghasemi Ghahsare M., and Kafi M. 2015. Scientific and practical flowering
19
20. Ghosh P.K; (Dayal, Devi, Bandyopadhyay, K.K and Mohanty M). 2006. "Evaluation of straw and polythene mulch for enhancing productivity of irrigated summer groundnut". Field Crops Research, 99, 76–86.
20
21. Griesbach R.J., and Berberich S.M. 1995. The early history of research on ornamental plants at the U S. Department of Agriculture from 1862 to 1940. Horticultural Science 30: 421–425.
21
22. Griffith M., and Yaish M. W. F. 2004. Antifreeze proteins in overwintering plants: a tale of two activities. Trends in Plant Science, 9: 399-405.
22
23. Hajo Hosseini A., Javad Pour Y., and Razavi M. 2011. Frostbite in agriculture and ways to control it. Technical and Promotional Journal of Yazd Province Agricultural Organization. 3-19.
23
24. Izadi darbandi E., Yosef sani M., Nezami A., Musavi M.J., Keikha F., and Nezami S. 2012. Effect of freezing stress on Dianthus barbatus. Environmental Stresses in Crop Sciences, 4(2):117-125.
24
25. Jodaugienė D., Pupalienė R., Sinkevičienė A., Marcinkevičienė A., Žebrauskaitė M. Baltaduonytė K., and Čepulienė R. 2010. The influence of organic mulches on soil biological properties. Zemdirbyste-Agriculture, 97 (2): 33-40
25
26. Lies Jeffery.K; (Dosmann, Michael.S). 1999. "Effect of organic and mineral mulches on soil properties and growth of Fairview Flame® red maple trees". Journal of Arboriculture, 3, 163-167.
26
27. Malek M.M., Galeshi S., Zeinali A., Ajam N., and Malek M. 2012. Investigation of leaf area index, dry matter and crop growth rate on the yield and yield components of soybean cultivars. Electronic Journal of Crop Production, 5(4):1-17.
27
28. Mir Mohammadi A.M. 2005. Physiological and breeding aspects of cold and frost tensions in crops. Gulben Publishing House of Isfahan.
28
29. Munns R. 2002. Comparative physiology of salt and water stress. Plant, Cell and Environment, 25: 239–250.
29
30. Naidu B. and Thusitha G. 2005. Increasing cold tolerance in rice by selecting for high polyamine and gibberellic acid content. Australian Journal of Plant Physiology 25: 793-800.
30
31. Nezami A., Borzooei A., Jahani M., Azizi M., and Sharif A. 2007. Electrolyte leakage as an indicator of freezing injury in colza (Brassica napus L.). Iranian Journal of Field Crops Research. 5: 167-175
31
32. Ramakrishna A.; (Tam, Hoang Minh, Wani, Suhas.P and Lomg, Tranh Dinh). 2006. Effect of mulch on soil temperature, moisture, weed infestation and yield of groundnut in northern Vietnam. Field Crops Research, 95, 115–125.
32
33. Rashed Mohassel M.H., Nezami A., Bagheri A., Haj Mohammadnia K., Bannayan M. 2009. Evaluation of freezing tolerance of two fennel ecotypes under controlled conditions. Journal of Herbs, Spices and Medicinal Plants, 15(1): 131-140.
33
34. Rashed Mohassel M.H., Nezami A., Bagheri A., Haj Mohammadnia K., Bannayan M. 2009. Evaluation of freezing tolerance of two fennel ecotypes under controlled conditions. Journal of Herbs Spices Medicinal Plants, 15, 131-140.
34
35. Roe N. E., Stofella J., and Ggreatz D. 1997. Compost from various municipal solid wastes feed stocks affect vegetable crops, II Growth, yield and fruit quality. J. ASHS. 122: 433-437.
35
36. Shaikh A. El., and Fouda T. 2008. Effect of different mulching types on soil temperature and cucumber production under Libyan conditions.
36
37. Shooshtarian S., A., Salehi H., and Tehrani far A. 2011. Study of the growth and development characteristics of ten plant species in the Kish Island green area during the warm season. Journal of Agroecology, 4:514-524.
37
38. Smartt J. 1994. The groundnut crops. A scientific basis for improvement. London. Chapman and Hall. pp: 734-735
38
39. Steward Larry G; (Davis Sydnor, T and Bishop, Bert). 2003. "The ease of ignition of 13 landscape mulches". Journal of Arboriculture, 6, 317-321.
39
40. Teutonica R. A., Palta J.P., and Osborn T. C. 1993. In vitro freezing tolerance in relation to winter survival of rapeseed cultivars. Crop Science, 33: 103-107.
40
41. Warmund R.M., Guinan P., and Fernandez G. 2008. Temperatures and cold damage tosmall fruit crops across the eastern United States associated with the April 2007 freeze. Horticultural Science 43: 1643-1647.
41
42. Zhang G.S. (Hu, X.B, Zhang, X.X and Li, J.C). 2013. Effect of plastic mulch and winter catch crop on water availability andvegetable yield in a rain-fed vegetable cropping system at mid-Yunnan plateau, China. Scientia Horticulturae, 164, 333-339. 5(4):1-17.
42
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین مهمترین عوامل موثر بر عملکرد باغات زیتون شمال ایران
یکی از روشهای نوین در ارزیابی اراضی نسبت به کاربریهای مختلف، مدلسازی یا شبیهسازی کاربری مورد نظر است. با توجه به اهمیت عوامل موثر بر عملکرد باغات زیتون کشور، این ارزیابی در شمال ایران در بیش از 80 باغ زیتون شهرستان رودبار استان گیلان که مهمترین باغات زیتون کشور واقع شده است با استفاده از مدل شبکه عصبی مصنوعی انجام شد. عملکرد محصول باغات زیتون تحت تاثیر عوامل مختلف خاکی، آبی، توپوگرافی و اقلیمی میباشند، که در مجموع بیست و هشت عامل موثر بر عملکرد زیتون انتخاب و به عنوان متغیرهای ورودی مدل انتخاب شدند. این متغیرها عبارت بودند از خصوصیات خاک شامل EC، میزان مواد خنثی شونده (TNV)، درصد کربن آلی، فسفر قابل جذب، پتاسیم قابل جذب، درصد رس و درصد سیلت، خصوصیات آب آبیاری شامل EC و میزان آب آبیاری، خصوصیات توپوگرافی شامل ارتفاع و شیب، غلظت عناصر غذایی در برگ شامل نیتروژن، فسفر، پتاسیم، آهن و روی، عوامل اقلیمی شامل ساعات آفتابی، میزان تبخیر، میزان متوسط دما به عنوان متغیرهای ورودی و عملکرد محصول به عنوان خروجی مدلهای شبکه عصبی مصنوعی در نظر گرفته شد. نمونههای خاک، آب و برگ از باغات به طور همزمان در مرداد ماه جمع آوری شده و عوامل توپوگرافی از طریق میانیابی در محیط GIS و با استفاده از نرمافزار ArcGisبدست آمد و اطلاعات مربوط به عوامل اقلیمی نیز از ایستگاههای هواشناسی منطقه و روش میانیابی بدست آمد. پس از تعیین بهترین ساختار شبکه عصبی با میزان R آزمون 80 درصد، به کمک آنالیز حساسیت به روش Hill، عکسالعمل مدل به هر یک از متغیرهای ورودی بررسی و مهمترین فاکتورهای تأثیرگذار بر عملکرد محصول زیتون به دست آمد. بر اساس نتایج آنالیز حساسیت، مهمترین پارامترهای مؤثر در عملکرد محصول زیتون، به ترتیب نیتروژن برگ، فسفر خاک، تبخیر زمستان، تبخیر تابستان، میانگین دمای پاییز، ساعات آفتابی تابستان، میزان پتاسیم برگ، شوری خاک، شوری آب و شیب میباشند. که به طور خلاصه میتوان به الویت تامین عناصر غذایی ماکرو المنت مانند نیتروژن و فسفر و تامین رطوبت مورد نیاز با توجه به تبخیر منطقه حتی در فصل زمستان برای باغداران تاکید نمود.
https://jhs.um.ac.ir/article_37163_8beff9c87cc539180263514eb697724a.pdf
2020-02-20
743
755
10.22067/jhorts4.v33i4.82069
آنالیز حساسیت
زیتون
شبکه عصبی مصنوعی
گیلان
مدل سازی
علی
آجیلی لاهیجی
lahigy123@gmail.com
1
دانشگاه آزاد تهران واحد علوم و تحقیقات
AUTHOR
علی
محمدی ترکاشوند
a.mohammadi@srbiau.ac.ir
2
واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران
LEAD_AUTHOR
عبدالمحمد
محنت کش
3
شهرکرد
AUTHOR
میرناصر
نویدی
4
کرج
AUTHOR
1- Aguilera F., and Valenzuela. L.R, 2014. Forecasting olive crop yields based on long-term aerobiological data series and bioclimatic conditions for the southern Iberian Peninsula. Spanish Journal of Agricultural Research 2014 12(1): 215-224, Instituto Nacional de Investigacion Tecnologia Agraria Alimentaria (INIA) .Available http ://dx.doi.org /10.5424 /sjar/2014121-4532
1
2- Agyare W.A., S.J. Park., and P.L.G. V lek. 2007. Artificial neural network estimation of saturated hydraulic conductivity. Vadose Zone J. 6:423-431.
2
3- Albrizio R., Todorovic M., Matic T., and Stellacci A. M. 2010. Comparing the interactive effects of water and nitrogen on durum wheat and barley grown in a Mediterranean environment. Field Crop Research 115: 179-190.
3
4- Alcoz M.M., F.M. Hons and V.A. Haby. 1993. Nitrogen fertilization timing effect on wheat production, nitrogen uptake efficiency, and residual soil nitrogen. Agron. J. 85:1198-1203.
4
5- Anonymous. 2017. Statistical Booklet of Gilan Jihad Agriculture Organization, Ministry of Agriculture Jihad.
5
6- Ayoubi S., and Jalalian A. 2006. Land Evaluation (Agriculture and Natural Resources Applications). Isfahan University of Technology Publ. (in Persian)
6
7- Ayoubi S., Zamani S. M. and Khormali F. 2009. Wheat Yield Prediction through Soil Properties Using Principle Component Analysis, Iranian Journal of Soil and Water Research, 40 (1), 51-57. (In Persian)
7
8- Bagheri S., Gheysari M., Ayoubi Sh. and Lavaee N. 2012. Silage maize yield prediction using artificial neural networks. Journal of Plant Production, 19(4): 77-95. (in Persian with English abstract).
8
9- Bagherzadeh A., Ghadiri E., Souhani Darban.A. R.,and Gholizadeh.A. 2016. Land suitability modeling by parametric-based neural networks and fuzzy methods for soybean production in a semi-arid region. Model. Earth Syst. Environ. (2016) 2:104 .DOI 10.1007/s40808-016-0152-4
9
10- Black C.A., Evans D.D., White J.L., Ensminger L.E., and Clark F.E. 1965. Methods of Soil Analysis, Agronmy Monograph No. 9, Part II: Chemical and microbiological properties, Am.Soc. Argon ., Madison, WI, USA.
10
11- Bremmer JM., Mulvaney CS. 1982. Total nitrogen. Methods of Soil Analysis, Agronmy Monograph No. 9, Part II: Chemical and microbiological properties, Am.Soc. Argon., Madison, WI, USA.
11
12- Chartzoulakis K. 2005. Salinity and olive: growth, salt tolerance, photosynthesis and yield. Agriculture Water Management. 78: 108–121
12
13- Chen Z. X., Ren J. Q., Zhou Q. B., and H. J, Tang. 2008. Regional yield estimation for winter wheat with MODIS-NDVI data in Shandong, China. International Journal of Applied Earth Observation and Geoinformation, 10:403−413.
13
14- Correia P. J., I. Anast´acio M. Da F´e Candeias and M. A.Martins-Louc¸˜ao “Nutritional diagnosis in carob-tree: relationships between yield and leaf mineral concentration,” Crop Science, vol. 42, no. 5, pp. 1577–1583, 2002.
14
15- Doraiswamy P. C., Moulin S., Cook P. W., and V., Stern. 2003. Crop yield assessment from remote sensing. Photogrammetric Engineering and Remote Sensing, 69: 665−674
15
16- Duarte F., N. Jones and L. Fleskens.2008. “Traditional olive orchards on sloping land: sustainability or abandonment?” Journal of Environmental Management, vol. 89, no. 2, pp. 86–98, 2008.
16
17- Erel R. 2008. Flowering and Fruit Set of Olive Trees in Response to Nitrogen, Phosphorus, and Potassium. J. AMER. SOC. HORT. SCI. 133(5):639–647
17
18- Galan C., Garcia-Mozo H., Vazquez L., Ruiz Valenzuela L.,Diaz de la Guardia C., and Dominguez E. 2008. Modeling olive crop yield in Andalusia, Spain. Agron J 100: 98-104
18
19- Gee G.W., and Bauder J.W. 1986. Particle size analysis. In: Klute A. (Ed), Methods of soil analysis. Part 1. 2nd ed. Agron. Monogr. 9. ASA. Madison. WI, USA. pp: 383-411.
19
20- Graaff J. De., and L. A. A. J. Eppink.1999. “Olive oil production and soil conservation in southern Spain, in relation to EU subsidy policies,” Land Use Policy, vol. 16, no. 4, pp. 259–267, 1999.
20
21- Heydari M. 2006. Identification of dominant soils and the effect of their properties on leaf concentration, quantity and quality of pistachio in Anar region, Rafsanjan. MSc. Thesis, Soil Science Department, Agricultural College, University of Shahrekord, Shahrekord, Iran. (In Persian with English abstract).
21
22- Hill M. C. 1998. Methods and guidelines for effective model calibration. U.S.Geological
22
23- Hosseini-Mazinani M., Torkzaban B.2013. Iranian olive catalogue "Morphological and molecular characterization of Iranian olive germplasm". National Institute of Genetic Engineering and Biotechnology.2013. 978-964-8516-23-4.
23
24- Kaul M., Hill R.L. and Walthall, C. 2005. Artificial neural networks for corn and soybean yield prediction. Agricultural Systems, 85: 1-18.
24
25- Keshavarzi A., Sarmadian F., Sadeghnejad M., and Pezeshki P.2010.Developing pedotransfer functions for estimating some soil properties using artificial neural network and multivariate regression approaches.ProEnvironment, 3: 322-330.
25
26- Khairunniza-Bejo S., Mustaffha S., Ishak W., Ismail W. 2014.Application of artificial neural network in predicting crop yield. A review. Journal of Food Science and Engineering, 4,1–9.
26
27- Khakural, B.R., Robert, P.C., and Huggins, D.R. 1999. Variability of corn/soybean yield and soil/landscape properties across a southwestern Minnesota landscape. In Proceedings of the fourth international conference on precision agriculture, pp: 573-579.
27
28- Maselli F., and F. Rembold. 2001. Analysis of GAC NDVI data for cropland identification and yield forecasting in Mediterranean African countries. Photogrammetric Engineering and Remote Sensing, 67: 593−602.
28
29- McLean EO. 1982. Soil pH and lime requirement. Methods of Soil Analysis, Agronmy Monograph No. 9, Part II: Chemical and microbiological properties, Am. Soc. Argon., Madison, WI, USA. pp. 199-233.
29
30- Mehnatkesh A. 2012. Modeling of Soil and landscape and prediction of dryland wheat production using different models in central Zagros, Ph.D. thesis in Isfahan University of Technology(In Persian with English Summary)
30
31- Mehnatkesh A., and Ayoubi S., and Dehghani A.2017. Determination of the Most Important Factors on Rainfed Wheat Yield by Using Sensitivity Analysis in Central Zagros. Iranian Journal of Field Crops Research Vol. 15, No. 2, summer. 2017, p. 257-266 (In Persian with English Summary)
31
32- Menhaj M., 2002. Neural Network Foundations. Iran Amir Kabir University of Technology Publications.
32
33- Miao Y., Mulla D.J. and Rober P.C. 2006. Identifying important factors influencing corn yield and grain quality variability using artificial neural networks. Precision Agriculture, 7: 117–135.
33
34- Michelakis N. 2002. Olive Orchard Management: Advances and problems. Proc. 4th International Symposium on Olive Growing. Eds. C. Vitagliano and G.P. Martelli. Acta Hort. 586: 239-245.
34
35- Mohammadi H., and Zinanlou A., and Roshan A. 2008. Olive Temperature Compatibility Modeling (Olea europaea L.) in Iran, Geographical Research, No. 64, pp. 37-51. (in Persian)
35
36- Montazer A.A., Azedegan B., and Shahraki M. 2009. Performance evaluation of artificial neural network models in estimation of yield and water productivity of wheat on the basis of climate factor andconsumption water-nitrogen fertilizer. Iranian Journal of Water Research 3 (5): 17-29. (In Persian withEnglish Summary).
36
37- Niazian M., Sadat-Nooria S.A., Abdipourc M.2018. Modeling the seed yield of Ajowan (Trachyspermum ammi L.) using artificial neural network and multiple linear regression models.Industrial Crops & Products 117 (2018) doi.org/10.1016/j. indcrop.2018.03.013–234.
37
38- Norouzi M. 2009. Prediction of rainfed wheat yield using artificial neural network in Ardal district of Chaharmahal and Bakhtiari province. M.Sc. Thesis, Collage of Agriculture, Isfahan University of Technology, Isfahan, Iran. 112 p. (In Persian with English Summary)
38
39- Olsen S. R. and L. E. Sommers. 1982. Phosphorus. In: A. L. Page (Eds.), Methods of Soil Analysis, Agron. No. 9, Part 2: Chemical and microbiological properties, 2th ed. PP. 403-430
39
40- Page MC., Sparks DL., Noll M., Hendricks GJ. 1987. Kinetics and mechanisms of potassium release from sandy middle Atlantic Coastal Plain Soils. Soil Science Society of AmericaJournal 51: 1460-1465.
40
41- Quanqi L. Baodi D., Yunzhou Q., Mengyu L., and Jiwang Z. 2010. Root growth, available soil water, and water-use efficiency of winter wheat under different irrigation regimes applied at different growth stages in North China. Agr. Water Manage. 97, 1676–1682
41
42- Rapoport HF., Hammami SBM., Martins P., Perez-Priego O., and Orgaz F. 2012. Influence of water deficits at different times during olive tree inflorescence and flower development.Environ Exp Bot 77: 227-233.
42
43- Ribeiro H., Cunha M., Abreu I. 2008. Quantitative forecasting of olive yield in northern Portugal using a bioclimatic model. Aerobiologia 24: 141-150.
43
44- Richards LA. 1954. Diagnosis and improvement of saline and alkaline soils. USDA Handbook No. 60. U.S. Government Printing Office, Washington, DC. 160 pp.
44
45- Rossiter D. G. 2003. Biophysical models in land evaluation. Encyclopedia of life support system (EOLSS), EOLSS pub. UK.16pp.
45
46- Royo C., Aparicio N., Blanco R. and Villegas D. 2004. Leaf and green area development of durum wheat genotypes grown under Mediterranean conditions. Eur. J. Agron. 20: 419–430.
46
47- Russo C., Cappelletti G.M, Nicoletti G.M., Di Noia A.E., and Michalopoulos G.2016, Comparison of European Olive Production Systems Sustainability 2016, 8, 825; doi:10.3390/su8080825. www.mdpi.com/journal/sustainability
47
48- Sadras V.O., and Calviño P.A. 2001. Quantification of grain yield response to soil depth in soybean, maize, sunflower, and wheat. Agronomy Journal 93: 577–583
48
49- Salehi M.H., and HosseinifardS J. 2012. Soil and ground water relationships with pistachio yield in the Rafsanjan area, Iran. Communications in Soil Science and Plant Analysis, 43: 660-671.
49
50- Sepaskhah A. R., Azizian A., and Tavakoli A. R. 2006. Optimal applied water and nitrogen for winter wheat under variable seasonal rainfall and planning scenarios for consequent crops in a semi-arid region. Agr. Water Manage. 48: 113-122. (In Persian)
50
51- Seyyed Jalali A. 2015. Determination of Land Production Potential for Wheat in Gotvand and Shooshtar Regions of Khuzestan Province. Land Management Journal, Volume 3, Issue 1.2015. (In Persian)
51
52- Sharma S.D., Singh R. P., and Sharma C.L.2005.“Periodical changes in foliar macronutrient status of olive,” Acta Horticulturae, vol. 696, pp. 249–254, 2005.
52
53- Shirdeli A., and Tavasoli A. 2015. Forecast of Saffron Water Performance and Efficiency Using Neural Network Models Based on Climate and Water Factors. Journal of Agriculture and Technology of Saffron Volume 3, Issue 2, Summer 2015, p. 121- 131 University of Torbat Heydarieh Ministry of Science Research Technology, (in Persian)
53
54- Si C., and Farrell R.E. 2004. Scale-dependent relationship between wheat yield and topographic indices: A wavelet approach. Soil Sci. Soc. Am. J. 68: 577-587
54
55- Soares J.D.R., Pasqual M., Lacerda W.S., Silva S.O. and Donato S.L.R. 2013. Utilization of artificial neural networks in the prediction of the bunches’ weight in banana plants. Scientia Horticulturae, 155: 24–29.
55
56- Sudduth K.A., Drummond S.T., Birrell S.J., and Kitchen N.R. 1997. Spatial modeling of crop yield using soil and topographic data. P 439-447. In: Proceedings of the First European Conference on precision agriculture, edited by J.V. Stafford (BIOS Scientific Publishers, Oxford, UK).
56
57- Sys C., Van Ranst E., and Debaveye J.1993. Land evaluation, Part III. Crop requirements. General Administration for development cooperation, Brussels.
57
58- Sys C., Van Ranst E., and Debaveye J. 1991. Land evaluation, Part I and II. General Admhnstration for development cooperation, Brussels.
58
59- Taheri M., and Basirat M., and khoshzaman T., and Mostashari M. and Shakeri M. 2017. Soil Fertilizer and Plant Nutrition Management in Olive Trees, Soil and Water Research Institute of Iran, 2017, (in Persian)
59
60- Taheri M., Malakouti M. 2000. The necessity of optimum use of fertilizer for increasing the yield and quality improvement of olive in the country. Technical publication No: 66, Agricultural Education Publishing House. Karaj, Iran
60
61- The International Olive Oil Council. Available online: http://www.internationalolive -oil.org / (accessed on 18 April 2016).
61
62- Torkashvand A.M., Ahmadi A., Nikravesh N.L. 2017. Prediction of kiwifruit firmness using fruit mineral nutrient concentration by artificial neural network (ANN) and multiple linear regressions (MLR). Journal of Integrative Agriculture, 16, 1634–1644.
62
63- Touzani A. 1999. Olive farming and the environment. Proc. Of IOOC, Int. Seminar on Genetic Resources, Florence March 1999: 1-12.
63
64- Tubeileh A., Turkelboom F., Al-Ibrahem A., Thomas R., and Tubeileh. K.S. 2014. Modelling the Effects of Soil Conditions on Olive Productivity in Mediterranean Hilly Areas.International Journal of Agronomy.Volume 2014, Article ID 672123, 12 pages. Hindawi Publishing Corporation .doi:org/10.1155/2014/672123.
64
65- Velička R., Marcinkevičienė A., Pupalienė R., Butkevičienė L.M, Kosteckas R., Čekanauskas S.,and Kriaučiūnienė Z. 2016. Winter oilseed rape and weed competition in organic farming using non-chemical weed control. Zemdirbyste-Agriculture,103, 11
65
66- Walkey A., and Black I.A. 1982. An examination of Degtjareff method for determining soil organic matter and a proposed modification of the chromic acid in soil analysis. 1: Experimental. Soil Sci. 79: 459-465.
66
67- Wall L., Larocue D., and leger P.M.2007.The early explanatory power of NDVI in crop Yield modeling.International Journal of Remote Sensing, 29:2211-2225.
67
68- Wang L.G., Qiang Qi.Fu., and Liu Y. 2006. Soybean yield forecast application based on Hopfield ANN model. Am. Sci. 2: 85-89.
68
ORIGINAL_ARTICLE
اثر اسید جاسمونیک و اسید سالیسیلیک بر آنزیمهای آنتیاکسیدانی، فنیلآلانینآمونیالیاز و ترکیبات فنلی در استویا
اسید سالیسیلیک و جاسموناتها به عنوان ترکیبات پیامرسان کلیدی در فرآیند القا که منجر به تجمع متابولیتهای ثانویه میشود بسیار مورد توجه میباشند. محلولپاشی با این ترکیبات باعث القا تنش کاذب و برانگیخته شدن پاسخهای دفاعی در گیاه شده و بدنبال آن تولید متابولیت ثانویه افزایش مییابد. این آزمایش به منظور بررسی اثر محلولپاشی با اسید جاسمونیک و سالیسیلیک بر پراکسید هیدروژن، هدایت الکتریکی، فعالیت آنزیمهای GPX، GST، فنیلآلانینآمونیالیاز (PAL)، غلظت فنل کل، فلاونویید و آنتوسیانین در استویا در شرایط مزرعهای انجام شد. آزمایش حاضر در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با 12 تیمار و سه تکرار انجام شد. تیمارهای آزمایشی شامل محلولپاشی با اسید جاسمونیک، اسید سالیسیلیک و ترکیب تیماری از هر دوی آنها بود. محلولپاشی با اسید سالیسیلیک و جاسمونیک غلظت پراکسید هیدروژن را در بیشتر تیمارها نسبت به شاهد افزایش داد؛ بیشترین غلظت پراکسید هیدروژن در تیمار 20 میکرومولار اسید جاسمونیک - 1 میلیمولار اسید سالیسیلیک با غلظت 46/5 میکرومول در بافت تر مشاهده شد؛ گیاه در پاسخ به محلولپاشی با اسید جاسمونیک و سالیسیلیک فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدانی GPX و GST را در اغلب تیمارها افزایش داد؛ بیشترین میزان فعالیت آنزیم GPX در تیمارهای 5 میکرومولار اسید جاسمونیک و تیمار ترکیبی 20 میکرومولار اسید جاسمونیک - 1 میلیمولار اسید سالیسیلیک با میانگین144/0 و بیشترین میزان فعالیت آنزیمGST در تیمارهای 5 میکرومولار اسید جاسمونیک - 5 /0 میلیمولار اسید سالیسیلیک و 1 میلیمولار اسید سالیسیلیک با میانگین 35/0 میکرومول بر دقیقه بر گرم بافت تر مشاهده شد؛ به دنبال افزایش فعالیت سیستم آنتیاکسیدانی میزان هدایت الکتریکی در بیشتر تیمارها (10 تیمار) کمتر از شاهد بود؛ کمترین میزان هدایت الکتریکی در تیمار 20 میکرومولار اسید جاسمونیک - 1 میلیمولار اسید سالیسیلیک با میانگین 40 درصد مشاهده شد. محلولپاشی با اسید جاسمونیک و سالیسیلیک فعالیت آنزیم PAL را در تیمارهای ترکیبی بیشتر افزایش داد. بیشترین میزان فعالیت آنزیم PAL در تیمار 50 میکرومولار اسید جاسمونیک - 1 میلیمولار اسید سالیسیلیک مشاهده شد. بیشترین میزان غلظت فنل کل و فلاونویید در تیمار 20 میکرومولار اسید جاسمونیک - 1 میلیمولار اسید سالیسیلیک مشاهده شد. محلولپاشی با اسید جاسمونیک و سالیسیلیک غلظت آنتوسیانین را در تمام تیمارهای ترکیبی افزایش داد. محلولپاشی با اسید جاسمونیک و سالیسیلیک توانست غلظت ترکیبات فلاونوییدی را به عنوان یکی از ترکیبات مهم استویا افزایش دهد. نکته قابل توجه آن است که در بیشتر صفات، تیمارهای ترکیبی اسید جاسمونیک و سالیسیلیک تأثیر بیشتری در افزایش فعالیت آنزیم PAL، غلظت فنل کل، فلاونویید و آنتوسیانین داشتند.
https://jhs.um.ac.ir/article_37169_0b44ab44b7ec948f2f6d0c8a1debce37.pdf
2020-02-20
769
780
10.22067/jhorts4.v33i4.81571
پراکسید هیدروژن
فلاونویید
GPX
GST
سیده فاطمه
رسولی
f.rasouli86@gmail.com
1
دانشگاه صنعتی شاهرود
LEAD_AUTHOR
منوچهر
قلی پور
manoucher.gholipoor@gmail.com
2
دانشگاه صنعتی شاهرود
AUTHOR
کامبیز
جهان بین
jahanbin@shahroodut.ac.ir
3
دانشگاه صنعتی شاهرود
AUTHOR
حمیدرضا
اصغری
hamidasghari@gmail.com
4
دانشگاه صنعتی شاهرود
AUTHOR
1-Ashok Kumar F., Yadav S., Singh D., Dhyani P., and Ahuja S. 2011. A review on the improvement of stevia [Stevia rebaudiana (Bertoni)]. Plant Science Journal, 91: 1-27.
1
2-Bagal U.R., Leebens mack J.H., Walter Lorenz W., and Dean J.F.D. 2012. The phenylalanine ammonia lyase (PAL) gene family shows a gymnosperm specific line age. BMC Genoms, 13: (3) 1471-2164.
2
3-Bi H.H., Zeng R.S., Su L.M., An M., and Luo S.M., 2007. Rice allelopathy induced by methyl jasmonate and methyl salicylate. Journal of Chemical Ecology - Springer, 33(5): 1089-1103 -
3
4- Carlberg I., and Mannervik B. 1985. Glutathione reductase. Methode Enzymol, 113: 484-490.
4
5- Chance B., and Maehly A.C. 1955. Assay of catalases and peroxidases. Methods Enzymol, 11: 764-755.
5
6-Carmanol F., Sinet P.M., Rapin J., and Jerome H. 1981. Glutathione S-transferase of humen red blood cells assay, values in normal subjects and in two pathological circumstances: iperbillirubinemia and impaired renal function. Clinica chimica Acta Journal, 117 (3): 209-217.
6
7- Chan Z., and Tian S. 2006. Induction of H2O2 metabolizing enzyme and total protein synthesis by antagonistic yeast and salicylic acid in harvested sweet cherry. Postharvest Biology, Technology, 39: 314-320.
7
8-Chen J., Cheng Z., and Zhong S. 2007. Effect of exogenous salicylic acid on growth and H2O2- metabolizing enzymes in rice seedlings lead stress. Journal of Environment Science, 19: 44-49.
8
9-Divya P., Puthusseri B., and Neelwarne B. 2013. The effect of plant regulators on the concentration of carotenoids and phenolic compound in foliage of Coriander. Food ScienceTechnology, 56: 101-110
9
10 -Dong J., Wan G., and Liang Z. 2010. Accumulation of salicylic acid-induced phenolic compounds and raised activities of secondary metabolic and antioxidative enzymes in Salvia miltiorrhiza cell culture. Journal of Biotechnology, 148: 99-104
10
11-Goyal R., Samsher K., and Goyal S.K. 2010. Stevia (Stevia rebaudiana) a bio-sweetener: a review. International Journal of Food Sciences and Nutrition, 61 (1): 1-10.
11
12-Gupta P., Sharma S., and Saxena S. 2015. Biomass yield and steviol glycoside production in callus and suspension culture of Stevia rebaudiana treated with proline and polyethylene glycol. Applied Biochemistry and Biotechnology- Springer; 176(3): 863-74.
12
13- Haji_Mehdipour H., Khanavi M., Shkrchy M., Abadi Z., and Pirali-Hamadani M. 2008. The investigation of best method for phenolic compound extraction in Echinacea purpurea. Journal of Medicinal Plant, 8: 145-152.
13
14. Heredia J.B., and Cisneros-Zevallos L. 2009. The effect of exogenous ethylene and methyl jasmonate on PAL activity, phenolic profiles and antioxidant capacity of carrots (Daucus carota) under different wounding intensities. Post Biology Technology, 51(2): 242-249.
14
15- Jana S., and Choudhuri M.A. 1981. Glycolate metabolism of three submerged aquatic angiosperms during aging. Aquatic Botany, 12: 342-354.
15
16- Kar M., and Mishra D. 1976. Catalase, peroxidase, and polyphenoloxidase activities during rice leaf senescence. Plant Physiology, 57: 315-319.
16
17-Kovacik J., and Bklejdus B. 2012. Tissue and method specificities of phenylalanine ammonia-lyase assay. Plant Physiology Journal, 169: 1317-1320
17
18-Krizek D.T., Britz S.J., and Mirecki R.M. 1998. Inhibitory effects of ambient levels of solar UV-A and UV-B radiation on growth of cv. new red fire lettuce. Physiology Plantarum, 103: 1-7.
18
19-Kumari G. J., Reddy A.M., Naik S. T., Kumar S.G., Prasanthi J., Sriranganayakulu G., Reddy P.C., and Sudhakar C. 2006. Jasmonic acid induced changes in protein pattern, antioxidative enzyme activities and peroxidase enzymes in peanut seedlings. Biologia Plantarum, 50: 219-226
19
20- Marrs K.A. 1996. The functions and regulation of glutathione s-transferase in plants. Plant Physiology, Plant Molecular Biology, 47:127–58
20
21-Mendoza D., Cuaspud O., Ariasa J.P., Ruiz O., and Arias M. 2018. Effect of salicylic acid and methyl jasmonate in the production of phenolic compounds in plant cell suspension cultures of Thevetia peruviana. Biotechnology Reports, (19): 1-19
21
20-Mikkelsen M. D., Petersen B. L., Glawischnig E., Jensen A. B., Andreasson E., and Halkier B. A. 2003. Modulation of CYP79 genes and glucosinolate profiles in Arabidopsis by defense signaling pathways. Plant Physiology Journal, 131(1): 298-308.
22
23- Mita S., Murano N., Akaike M., and Nakamura K. 1997. Mutants of Arabidopsis thaliana with pleiotropic effects on the expression of the gene for beta-amylase and on the accumulation of anthocyanin those are inducible by sugars. Plant Journal, 11:841-851.
23
24- Moons A. 2005. Regulatory and functional interactions of plant growth regulators and plant glutathione S-transferases (GSTs). Plant Hormones; 72: 155-202.
24
25- Popova L., Ananieva E., Hristova V., Christov K., Georgieva K., Alexieva V., and Stoinova Z.H. 2003. Salicylic acid and methyl jasmonte induced protection on photosynthesis to paraquat oxidative stress Bulg. Journal of Plant Physiology, 13: 133-152.
25
26- Rao M.V., Paliyath G., Ormord D.P., and Watkins C.B. 1997. Influence of salicylic acid on H2O2 production, oxidative stress and H2O2 metabolizing enzymes Salicylic acid-mediated oxidative damage requires H2O2. Plant Physiology, 115: 137-149.
26
27-Rasouli F., Gholipuor M., Jahanbin K., and Asghari H.R. 2018. Effect of salicylic acid and jasmonic acid on induction of oxidative stress, increasing resistance and yield of Echinacea purpurea L. Crop Plant Production, 11(2): 109-122. (In Persian)
27
28-Samadi S., Ghasemnezhad A., and Alizadeh M. 2014. Investigation on phenylalanine ammonia-lyase activity of artichoke (Cynara scolymus L.) affected by methyl jasmonate and salicylic acid in in-vitro conditions. Journal of Plant Production Research, 21: 135-148.
28
29- Sangtarash M.H., Qaderi M.M., Chinnappa C.C., and Reid D.M. 2009b. Carotenoid differential sensitivity of canola (Brassica napus) seedlings to ultraviolet-B radiation, water stress and abscisic acid. Environmental and Experimental Botany, 66 (2): 212-219
29
30- Suzuki A., Miller G., Morales J., Shulaev V., Torres M.A., and Mittler R. 2011. Respiratory burs toxi dases: theeng in esof ROS signaling. Curr Opin. Plant Biology, 14, 691–699
30
31-Taiz L., and Ziger A. 2006. Plant Physiology. 13, pp: 619-6230
31
32-Wasternack C., and Hause B. 2013. Jasmonates: Biosynthesis, perception, signal transduction and action in plant stress response, growth and development. An update to the 2007 review in Annals of Botany. Annals of Botany, 2013; 111: 1021±1058
32
33- Yan B., Dai Q., Liu X., Huang S.h., and Wang Z. 1996. Flooding induce membrane damage, lipid oxidation and activated oxygen generation in Corn leaves. Plant and Soil Journal, 179:261-268.
33
34- Zhao J.L., Davis C., and Verpoorte R. 2005. Elicitor signal transduction leading to production of plant secondary metabolites. Biotechnology Advances Journal – Elsevier, 23: 283–333.
34
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی امکان القاء پلی پلوییدی در سوخهای سنبلک Muscari با استفاده از ته شکافی و تیمار کلشیسین
سنبلک به عنوان گل سوخدار مقاوم به سرما، با رنگ آبی و تمایل به گلدهی چندباره قابلیت استفاده زیادی در فضای سبز دارد. تهشکافی در تکثیر گلهای سوخدار به روش سنتی یا در ترکیب با تکنیک کشت بافت مورد استفاده قرار میگیرد. ترکیبات زیادی مانند کلشیسین میتوانند موجب پلیپلوییدی شوند. با هدف ارزیابی تاثیر همزمان تیمار کلشیسین و ته شکافی بر زندهمانی و احتمال ایجاد پلیپلوئیدی سوخهای سنبلک، دو آزمایش جداگانه هر کدام طی دو سال انجام شد. در آزمایش اول، تیمار کلشیسین 05/0 درصد در سه تیمار زمانی 24،12 و32 ساعت در دو گروه شکافزده و شکافنزده اعمال و در نهایت درصد زندهمانی، درصد گلدهی، فاکتورهای مرفولوژیکی و تراکم روزنه و طول و عرض روزنه ارزیابی شد. در آزمایش دوم تاثیر شکافدهی همزمان با تیمار کلشیسین 05/0 و 1/0 درصد به مدت 24 ساعت برای دوسال، مشابه آزمایش اول مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج نشان داد که شکافدهی سوخها و غلظت 1/0 درصد کلشیسین، تاثیر منفی بر میزان درصد زنده مانی و گلدهی سوخهای سنبلک داشته است. تیمار سوخها با کلشیسین 05/0 درصد به مدت 12 ساعت، بدون شکافدهی یکی از بهترین روش تیمار برای القا پلی پلوییدی در گلهای سوخدار خصوصاً سنبلک میباشد. این در حالی است که تیمار 32 ساعت سوخ سنبلک با کلشیسین 05/0 در سال دوم بیشترین درصد زنده مانی (75 درصد) و درصد گلدهی (10 درصد) را به خود اختصاص داد. غلظت بالای کلشیسین و شکافدهی درصد زنده مانی و درصد گلدهی را کاهش دادند. در نهایت برای افزایش احتمال القاء پلی پلوییدی در سنبلک و سایر گیاهان سوخی، طبق نتایج هر دو آزمایش انجام شده غلظت 05/0 درصد کلشیسین به مدت 24 ساعت بدون تیمار شکافدهی با زنده مانی 85 درصد و گلدهی 45 درصد در سال اول و زنده مانی 70 درصد و گلدهی 5 درصد در سال دوم توصیه میشود. این تیمار به نحو معنیداری تعداد روزنه را 50 درصد کاهش و طول روزنه و عرض روزنه را 50 درصد افزایش داد.
https://jhs.um.ac.ir/article_37177_a71b44350afa4a92059bdd9227b15b20.pdf
2020-02-20
781
792
10.22067/jhorts4.v33i4.82408
تکثیر
درصد زنده مانی
روزنه
گل سوخدار
عبدالرضا
رمضان قنبری
imanroohollahi@gmail.com
1
دانشگاه شاهد
AUTHOR
ایمان
روح اللهی
i.rohollahi@shahed.ac.ir
2
دانشگاه شاهد
LEAD_AUTHOR
1. Kamenetsky R., and Okubo H. 2012. Ornamental Geophytes [Internet]. CRC Press. Available from: http://www.crcnetbase.com/doi/book/10.1201/b12881
1
2. Nowak J., and Rudnicki R.M. 1993. Hyacinthus. The physiology of flower bulbs. 335–47.
2
3. De Hertogh A., and Le Nard M (Eds). 1993. The Physiology of Flower Bulbs. Amsterdam, Netherlands. Elsevier Science.
3
5. McDonald M.B., and Kwong F.Y. 2005. Flower seeds: biology and technology [Internet]. McDonald MB, Kwong FY, editors. Flower seeds: biology and technology. Wallingford: CABI. Available from: http://www.cabi.org/cabebooks/ebook/20053005270
4
6. Alan A.R., Lim W., and Mutschler M.A. 2007. Earle ED. Complementary strategies for ploidy manipulations in gynogenic onion (Allium cepa L.). Plant Science. 173(1):25–31. Available from: https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0168945207001057
5
7. Jia M., Fei W., Aiping J.I.A., and Lina Z. 2011. Colchicines Induced Polyploid Plants of Muscari armeniacum. Acta A griculturae Boreali-occidentalis Sinica. 20:114–8.
6
8. Volenikova M., and Ticha I. 2001. Insertion profiles in stomatal density and sizes in Nicotiana tabacum L. plantlets. Biologiacal Plantarum. 44(2):161–5. Available from: http://link.springer.com/10.1023/A:1017982619635
7
9. Malekzadeh Shafarodi S., Ghanni A., Habibi M., and Amiri A.1390. Evaluation possibility of polyploidy induction in Ocmimum basilicum. Iranian journal of horticultire science. 25:461–9.
8
10. Omidbaigi R., Mirzaee M., Hassani M.E., and Moghadam M.S. 2010. Induction and identification of polyploidy in basil (Ocimum basilicum L.) medicinal plant by colchicine treatment. International Journal of Plant Production. 4(2):87–98.
9
11. Thao N.T.P., Ureshino K., Miyajima I., Ozaki Y., and Okubo H. 2003 Induction of tetraploids in ornamental Alocasia through colchicine and oryzalin treatment. Analyzer. 19–25.
10
12. Roy A., Leggett G., Koutoulis A. 2001. In vitro tetraploid induction and generation of tetraploids from mixoploids in hop (Humulus lupulus L.). Plant Cell Reports [Internet]. 1; 20(6):489–95. Available from: http://link.springer.com/10.1007/s002990100364
11
13. Kuang Q., Liang G., Guo Q., and Li X. 2004. Polyploid induction of Arctium lappa by colchicine. Plant Physiology Communications. 40(2):157–68. Available from: https://europepmc.org/abstract/cba/399005
12
14. Vandenhout H., Ortiz R., Vuylsteke D., Swennen R., and Bai K. V. 1995. Effect of ploidy on stomatal and other quantitative traits in plantain and banana hybrids. Euphytica. 83(2):117–22.
13