##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

رسول نجیب محمد فارسی امین میرشمسی کاخکی سعید رضا وصال

چکیده

تولید لاین‌های خالص به‌وسیله القاء آندروژنز راه‌حلی امیدبخش و جایگزین برای برنامه‌های اصلاح کلاسیک می‌باشد. این تکنولوژی در گوجه‌فرنگی به توسعه و اصلاح روش‌ها نیازمند است. یکی از عوامل موفقیت القاء آندروژنز در گوجه‌فرنگی استفاده از میکروسپورهایی است که در مرحله مناسب نمو قرار داشته باشند. بررسی سیتولوژیکی دقیق‌ترین روش برای تعیین مرحله مناسب نمو میکروسپورها است. در این مطالعه بررسی خصوصیات سیتولوژیکی میکروسپورها و دانه‌های گرده در طی روند نمو طبیعی و ارتباط بین طول جوانه گل و طول بساک صورت پذیرفت. نتایج نشان داد که همبستگی بین طول جوانه‌گل و طول بساک معنی‌دار است (0001/0 P <، 8/0 r =). در بررسی‌های ‌سیتولوژیکی مشخص شد که مسیر طبیعی نمو میکروسپور در گوجه‌فرنگی شامل سه فاز تقسیم میوز تا تشکیل تتراد، تفکیک تترادها و بلوغ میکروسپور به دانه‌گرده است که میکروسپورها در هر مرحله از لحاظ اندازه و خصوصیات مورفولوژیکی با هم متفاوت هستند. بیشترین فراوانی میکروسپورهای مرحله میوز تا اواسط مرحله میکروسپورهای تک‌هسته‌ای در جوانه‌های با طول 9/4-4 میلی‌متر مشاهده شد. بنابراین از این نتایج می‌توان برای تعیین زمان مناسب برداشت جوانه‌های گل در مطالعات القاء آندروژنز جهت انحراف میسر نمو طبیعی میکروسپورها به سمت مسیر اسپوروفیتی برای القاء کالوس یا القاء مستقیم جنین‌های هاپلوییدی بهره جست.

جزئیات مقاله

مراجع
1- Bal U., and Abak K. 2005. Induction of symmetrical nucleus division and nucleus multicellular structures from the isolated microspores of tomato (Lycopersicumesculentum L.). Biotechnololgy and Biotechnological Equipement, 19(1):35-42.
2- Bal U., and Abak K. 2007. Haploidy in tomato (Lycopersiconesculentum Mill.). Euphytica, 158:1–9.
3- EnayatiShariatpanahi M., and Emami Meybodi D. 2009. Microspore: a haploid cell with various applications in genetics and plant breeding. Modern Genetics Journal, 4(3):5-16. (in Persian(
4- EnayatiShariatpanahi M., and Herbele-Bros E. 2009. Induction of embryogenesis in microspores of Tomato (Lycopersicumesculrntum Mill.) cv. Microtom. Seed and Plant Production Journal, 25-2(3):315-328. (in Persian(
5- Forster B.P., and Thomas W.T. 2003. Doubled haploids in genetic mapping and genomics. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, the Netherlands.
6- Goralski G., Rozier F., and Matthys E. 2004. Cytological features of various microspore derivatives appearing during culture of isolated maize microspores. ActaBiologicaCracoviensia Series Botanica 47(1):75–83.
7- Jain S. M., Sopory S. K., and Villeux R. E. (eds). 1997. In vitro haploid production in higher plants. Vol. 1, kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands.
8- Jain S. M., Sopory S. K., and Villeux R. E. (eds). 1997. In vitro haploid production in higher plants. Vol. 5, kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands.
9- Kasperbauer M. J., and Wilson H. M. 1979. Haploid plant production and use. In: Durbin R. D. (eds). Nicotiana procedures for experimental use. Washington, United States Department Of Agriculture Technical Bulletin, 1586:33-39.
10- Lauxen M., Kaltchuk-Santos E., Ching-yeh H., and Callegari-Jacques S. M. 2003. Associaion between floral bud size and developmental stage in soybean microspores. Brazilian Archives Of Biology And Technology 46:515-520.
11- Marina I., Tsvetova L., and Elkonin A. 2013. Cytological investigation of pollen development in sorghum line with male sterility induced by sodium ascorbate in tissue culture. American Journal of Plant Sciences 4:11-18.
12- Perera P. I. P. 2003. Cytological examination of microspore development for microspore and anther culture of coconut (Cocosnucifera L). Printed in Sri Lanka, Cocos, 15:53-59.
13- Summers W. L., J. Jaramillo T. B. 1992. Microspore developmental stage and anther length influence the induction of tomato anther callus. Horticultural Science 27:838-840.
14- Segui-Simarro J. M., and Nuez F. 2008. Pathways to doubled haploidy: chromosome doubling during androgenesis. Cytogenet GenomeResearch 120:358–369.
15- Segui-Simarro J.M., and Martinez P. 2011. Androgenesis in recalcitrant solanaceous crops (a Review). Plant Cell Reports 30:765-778.
16- Tomasi P., Dierig D. A.; Backhaus R. A. and Pigg K. B. 1999. Floral bud and mean petal length as morphological predictors of microspore cytological stage in Lesquerella. Horticulture Science, 34:1269-1270.
17- Touraev A., and Heberle-Bors E. 2005. Regulation of developmental pathways in cultured microspores of tobacco and snapdragon by medium pH.Planta 219:141–146.
18- Touraev A., Brian P., and Mohan S. (eds). 2009. Advances in Haploid Production in Higher Plants. Springer Science.
19- Zagorska N. A., Shtereva A., and Dimitrov B. D. 1998. Induced androgenesis in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.): II. Factors affecting induction of androgenesis. Plant Cell Reports 18:312-317.
20- Zhijun L. I., Yanrong Z., and Chunyan L. I. 2009. Cytological observation of the microspore development of chinese kale and false pakchoi. Agricultural China 3(1):24–28.
21- Zhao D. X., Yang X., Yan-Chen H. and Sheng W.H. 2013. Cytological investigation of anther developmentin DGMS line shaan-GMS in (Brassica napus L). Czech J. Genetics Plant Breeding, 49:16–23.
ارجاع به مقاله
نجیبر., فارسیم., میرشمسی کاخکیا., & وصالس. ر. (2015). تعیین سیتولوژیکی مراحل مختلف توسعه میکروسپور در چهار رقم گوجه‌ ‌فرنگی (Lycopersicum esculentum Mill). علوم باغبانی, 30(4), 634-642. https://doi.org/10.22067/jhorts4.v0i0.36609
نوع مقاله
علمی - پژوهشی